Сравнительное исследование поведения клетокспинального ганглия крысы и линии РС12на поверхностях, модифицированныхбиоадгезивными полимерами

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Методом динамического рассеяния света исследована
адсорбция на полистироле биоадгезивных полимеров (полиорнитина, желатина, ламинина), оценен их вклад в дзетапотенциал модифицированной поверхности. В присутствии
сыворотки клетки РС12 не проявляют избирательной адгезии. При культивировании в бессывороточной среде с фактором роста нервов полистирол с адсорбированным полиорнитином способствует первичной адгезии клеток РС12.
Последующая адсорбция ламинина индуцирует распластывание и дифференцировку клеток в нейрональном направлении. Первичные нейроны, выделенные из спинальных
ганглиев крысы, прикрепляются предпочтительно к поверхности, модифицированной полиорнитином. На поверхности
полиорнитин-ламинин нейроны интенсивно образуют нейриты, что коррелирует с пролиферацией глиальных клеток,
позитивных по белку S100. Результаты показывают, что
клетки РС12 и первичные нейроны проявляют сходный отклик на материал поверхности, однако последние клетки
значительно более чувствительны к этому фактору. Выделенная клеточная культура позволяет исследовать взаимосвязь процессов образования нейритов и пролиферации
шванновских клеток на различных биоматериалах.

Об авторах

Л Д Якунина

Казанский (Приволжский) федеральный университет, Казань

Казанский (Приволжский) федеральный университет, Казань

Р А Курбанов

Казанский (Приволжский) федеральный университет, Казань

Казанский (Приволжский) федеральный университет, Казань

О В Бондарь

Казанский (Приволжский) федеральный университет, Казань

Казанский (Приволжский) федеральный университет, Казань

Т И Абдуллин

Казанский (Приволжский) федеральный университет, Казань

Казанский (Приволжский) федеральный университет, Казань

Список литературы

  1. Sarmento B., Andrade F., Silva S.B. et al. Cell-based in vitro models for predicting drug permeability. Expert. Opin. Drug Metab. Toxicol. 2012; 5: 607-21.
  2. Beaulieu M.M., Tremblay P.L., Berthod F. Tissue-engineered models of the nervous system. Med. Sci. 2009; 25(ΙΙΙ): 288-92.
  3. Pfister L.A., Papaloizos M., Merkle H.P. et al. Nerve conduits and growth factor delivery in peripheral nerve repair. J. Peripher. Nerv. Syst. 2007; 12: 65-82 .
  4. Schmidt C.E., Leach J.B. Neural tissue engineering: strategies for repair and regeneration. Biomed. Eng. 2003; 5: 293-347.
  5. Pollock M. Nerve regeneration. Curr. Opin. Neurol. 1995; 8: 354-8.
  6. Челышев Ю.А., Богов А.А. Экспериментальное обоснова- ние применения кондуитов нерва. Неврологический вестник 2008; 101-9.
  7. Tsai E.C., Dalton P.D., Shoichet M.S. et al. Matrix inclusion within synthetic hydrogel guidance channels improves specific supraspinal and local axonal regeneration after complete spinal cord transaction. Biomaterials 2006; 27: 519-33.
  8. Archibald S.J., Krarup C., Shefner J. et al. A collagen-based nerve guide conduit for peripheral nerve repair: an electrophysiological study of nerve regeneration in rodents and nonhuman primates. J. Comp. Neurol. 1991; 306: 685-96.
  9. Haipeng G., Yinghui Z., Jianchun L. et al. Studies on nerve cell affinity of chitosan-derived materials. J. Biomed. Mater. Res. 2000; 52: 285-95.
  10. Matyash M., Despang F., Mandal R. Novel soft alginate hydrogel strongly supports neurite growth and protects neurons against oxidative stress. Tissue Eng. 2012; 18(Ι-ΙΙ): 55-66.
  11. Tse K.H., Sun M., Mantovani C. et al. In vitro evaluation of polyester-based scaffolds seeded with adipose derived stem cells for peripheral nerve regeneration. J. Biomed. Mater. Res. 2010; 95(ΙΙΙ): 701-8.
  12. Nakamura T., Inada Y., Fukuda S. et al. Experimental study on the regeneration of peripheral nerve gaps through a polyglycolic acid-collagen (PGA-collagen) tube. Brain Res. 2004; 1027: 18-29.
  13. Zhang J., Oswald T.M., Lineaweaver W.C. et al. Enhancement of rat sciatic nerve regeneration by fibronectin and laminin through a silicone chamber. J. Reconstr. Microsurg. 2003; 19(VΙΙ): 467-72.
  14. Weinstein D.E. Review: The role of schwann cells in neural regeneration. Neuroscientist 1999; 5: 208-16.
  15. Bledi Y., Domb J.A., Linial M. Culturing neuronal cells on surfaces coated by a novel polyethyleneimine-based polymer. Brain Res. Protoc. 2000; 5(III): 282-9.
  16. Corey J.M., Lin D.Y., Mycek K.B. et al. Aligned electrospun nanofibers specify the direction of dorsal root ganglia neurite growth. J. Biomed. Mater. Res. A. 2007 Dec 1; 83(III): 636-45.
  17. Chen Y.S., Hsieh C.L., Tsai C.C. et al. Peripheral nerve regeneration using silicone rubber chambers filled with collagen, laminin and fibronectin. Biomaterials 2000; 21(XV): 1541-7.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Эко-Вектор, 2012



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: 

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах