Интеграция светочувствительных кардиомиоцитов в сердечные культуры как модель оптического биопейсмейкера

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Для возможного применения в терапии нарушений ритма сердца в настоящее время изучаются способы восстановления функций его проводящей системы с использованием репрограммированных клеток и биологических материалов, которые могли бы обеспечивать стабильный физиологический ритм в течение всей жизни, в частности, после интрамиокардиальной трансплантации. Однако, важным остается вопрос их выживаемости и образования электрофизиологических связей с кардиомиоцитами реципиента. В данной работе в качестве поисков рабочих подходов к созданию оптического биологического водителя ритма изучалась эффективность различных способов внесения и интеграции светочувствительной линии кардиомиоцитов ChR2-HL-1 в монослой неонатальных кардиомиоцитов крысы. Для исследования были выбраны два подхода к со-культивированию: интеграция в монослой изолированных клеток и кластеров линии Ch2-HL-1 в различной концентрации. Эффективность полученного таким образом модельного водителя ритма оценивалась следующими способами: методом оптического картирования производилась регистрация волн возбуждения, инициированных оптической стимуляцией, воздействующей исключительно на клетки линии Ch2-HL-1; иммуноцитохимическими методами производилась характеристика морфологии полученной со-культуры и оценивалась степень интеграции внесенных в монослой структур. В ходе проведенных исследований было показано, что наиболее эффективным методом является кластерный способ внесения клеток в первичную культуру: 100 % образцов с кластерами, внесенные спустя 6 ч. культивации монослоя, проявляли стабильную генерацию волн возбуждения на физиологически значимых частотах внешней стимуляции, по сравнению с 88 % для образцов с внесенными изолированными клетками на значениях частот, ниже физиологических. Более того, образцы с кластерным методом внесения в культуру оказались гораздо более устойчивыми (100 % при кластерном методе и 25 % при внесении изолированных клеток] к воздействию блокатора натриевых каналов, лидокаина. При этом эффективность интеграции зависела от условий роста клеток, что подробнее показано в результатах исследования. Полученные результаты в дальнейшем могут быть применены в разработке биологического водителя ритма.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

В. А Балашов

Московский физико-технический институт (государственный университет)

А. А Низамиева

Московский физико-технический институт (государственный университет); Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского

В. А Цвелая

Московский физико-технический институт (государственный университет)

К. И Агладзе

Московский физико-технический институт (государственный университет); Национальный медицинский исследовательский центр имени академика Е.Н. Мешалкина

Email: agladze.ki@mipt.ru

Список литературы

  1. Murphy C., Shelley E., O’Halloran A.M. et al. Failure to control hypercholesterolaemia in the Irish adult population: cross-sectional analysis of the baseline wave of The Irish Longitudinal Study on Ageing (TILDA). Ir. J. Med. Sci. 2017; 186 (4): 1009-17.
  2. Пиданов О.Ю., Богачев-Прокофьев А.В., Елесин Д.А. и др. Тораскопическая аблация для лечения пациентов с изолированной формой фибрилляции предсердий в России. Патология кровообращения и кардиохирургия. 2018; 22 (2): 14-21.
  3. Meyers J.D., Jay P.Y., Rentschler S. Reprogramming the conduction system: Onward toward a biological pacemaker. Trends Cardiovasc. Med. 2016; 26 (1): 14-20.
  4. Rosen M.R., Brink P.R., Cohen I.S. et al. Genes, stem œlls and biological pacemakers. Cardiovasc. Res. 2004; 64 (1):12-23.
  5. Ambrosi C.M., Boyle P.M., Chen K. et al. Optogenetics-enabled assessment of viral gene and cell therapy for restoration of cardiac excitability. Sci. Rep. 5. 2015; article number: 17350.
  6. Nussinovitch U Gepstein L. Optogenetics for in vivo cardiac pacing and resynchronization therapies. Nature biotechnology. 2015 Jul;33(7):750.
  7. Protze S.I., Liu J., Nussinovitch U. et al. Sinoatrial node cardiomyocytes derived from human pluripotent cells function as a biological pacemaker. Nat. Biotechnol. 2017; 35 (1): 56-68.
  8. Arrenberg A.B., Stainier D.Y., Baier H. et al. Optogenetic control of cardiac function. Science. 2010; 330 (6006): 971-74.
  9. Volkov O., Kovalev K., Polovinkin V. et al. Structural insights into ion conduction by channelrhodopsin 2. Science. 2017; 358 (6366): 8862.
  10. Crocini C., Ferrantini C., Coppini R. et al. Optogenetics design of mechanistically-based stimulation patterns for cardiac defibrillation. Sci. Rep. 6. 2016; article number: 35628.
  11. Zhang F, Wang LP, Boyden ES, Deisseroth K. Channelrhodopsin-2 and optical control of excitable cells. Nature methods 2006; 3(10):785.
  12. Chepeleva, E.V., Balashov, V.A., Dokuchaeva, A.A. et al. Analyis of biological compatibility of polylactide nanofibrous matrix vitalized with cardiac fibroblasts in a porcine model. Genes and Cells 2017; 12(4): 62-68
  13. Чепелева Е.В., Балашов В.А., Докучаева А.А. и др. Исследование биологической совместимости полилактидных нановолоконных матриксов, заселенных фибробластами сердца, в эксперименте на мини-свиньях. Гены и клетки 2017; 12(4]: 62-68
  14. Balashov V., Efimov A., Agapova O. et al. High resolution 3D microscopy study of cardiomyocytes on polymer scaffold nanofibers reveals formation of unusual sheathed structure. Acta Biomaterialia 2018; 68: 214-22.
  15. Sotnichenko A.S., Gubareva E.A. et al. Decellularized rat heart matrix as a basis for creation of tissue engineered heart. Cellular Transplantation & Tissue Engineering 2013; 8(3]: 86-94.
  16. Mao A.S., Shin J.W. et al. Deterministic encapsulation of single cells in thin tunable microgels for niche modelling and therapeutic delivery. Nature materials 2017; 16(2]: 236.
  17. Jia Z., Valiunas V., Lu Z. et al. Stimulating cardiac muscle by light: cardiac optogenetics by cell delivery. Circ. Arrhythm. Electrophysiol. 2011; 4 (5]: 753-60.
  18. Boyle P.M., Williams J.C., Ambrosi C.M. et al. A comprehensive multiscale framework for simulating optogenetics in the heart. Nat. Commun. 4. 2013; article number: 2370.
  19. Agladze N.N., Halaidych O.V., et al. Synchronization of excitable cardiac cultures of different origin. Biomater. Sci. 2017; 5 (9]: 1777-85.
  20. Yakushenko A., Gong Z., Maybeck V. et al. On-chip optical stimulation and electrical recording from cells. J. Biomed. Opt. 2013; 18 (11]: 111402.
  21. Claycomb W.C., Lanson N.A., Stallworth B.S. et al. HL-1 cells: a cardiac muscle cell line that contracts and retains phenotypic characteristics of the adult cardiomyocyte. PNAS USA 1998; 95 (6]: 2979-84.
  22. Picone JB, Sperelakis N, Mann Jr JE. Expanded model of the electric field hypothesis for propagation in cardiac muscle. Math. Comp. Model. 1991; 15(8]:17-35.
  23. Orlova Y, Magome N, Liu L, Chen Y, Agladze K. Electrospun nanofibers as a tool for architecture control in engineered cardiac tissue. Biomaterials 2011; 32(24]: 5615-24.
  24. Erofeev I.S., Agladze K.I. Two models of anisotropic propagation of a cardiac excitation wave. JETP Letters 2014; 100(5]: 351-4.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Эко-Вектор, 2018



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: 

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах