МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ ВЛИЯНИЕ ФИКСАЦИИ ГИСТОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА НА РЕЗУЛЬТАТ ИММУНОГИСТОХИМИЧЕСКОГО ОКРАШИВАНИЯ



Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Общепринятым методом фиксации тканей является фиксация в формалине. Однако этот процесс связан с изменением химической структуры молекул и может оказывать влияние на сохранность их эпитопов, степень которого усугубляется при длительном пребывании ткани в фиксирующей жидкости. Для того чтобы стандартизировать результат исследования, следует, таким образом, стандартизировать длительность фиксации материала, а также предельную допустимую длительность отсрочки фиксации после отделения ткани от кровеносной системы организма. Помимо формалина, в современных условиях, в связи с изменением требований к скорости получения результата и сохранности молекулярного состава ткани, в практику входят новые реактивы и технологии фиксации Отмечается тенденция к переходу на коагулирующие фиксаторы на основе различных спиртов, воздействие которых на биомолекулы, в ряде случаев, является более щадящим Особенность белковых антигенов как объекта исследования заключается в высоком разнообразии химической структуры, что диктует необходимость индивидуализированного подхода к отработке протокола иммуногистохимического окрашивания, причём учитываться должно и влияние всех предшествующих факторов. При этом оптимизация процедуры проводится, преимущественно, эмпирически Существующие иммуногистохимические тесты адаптированы для работы с зафиксированной в формалине тканью, и их использование при проведении фиксации в иных условиях требует предварительных исследований и переработки протокола

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. Н Ваганова

ООО «БиоВитрум»

Санкт-Петербург, Россия

Список литературы

  1. Theiss A.P., Chafin D., Bauer D.R. et al. Immunohistochemistry of colorectal cancer biomarker phosphorylation requires controlled tissue fixation. PLoS One 2014; 9(11): e113608.
  2. Arima N., Nishimura R., Osako T. et al. The importance of tissue handling of surgically removed breast cancer for an accurate assessment of the Ki67 index. J. Clin. Pathol. 2015 Sep. 29 [Epub ahead of print].
  3. Bussolati G., Leonardo E. Technical pitfalls potentially affecting diagnoses in immunohistochemistry. J. Clin. Pathol. 2008; 61(11): 1184-92.
  4. Torlakovic E.E., Riddell R. Canadian Association of Pathologists-Association canadienne des pathologistes National Standards Committee/Immunohistochemistry: best practice recommendations for standardization of immunohistochemistry tests. Am. J. Clin. Pathol. 2010; 133(3): 354-65.
  5. Yildiz-Aktas I.Z., Dabbs D.J., Cooper K.L. et al. The effect of 96-hour formalin fixation on the immunohistochemical evaluation of estrogen receptor, progesterone receptor, and HER2 expression in invasive breast carcinoma. Am. J. Clin. Pathol. 2012; 137(5): 691-8.
  6. Kalkman S., Barentsz M.W., van Diest P.J. The effects of under 6 hours of formalin fixation on hormone receptor and HER2 expression in invasive breast cancer: a systematic review. Am. J. Clin. Pathol. 2014; 142(1): 16-22.
  7. Otali D., He Q., Grizzle W. E. The effect of antigen retrieval on cells fixed in 10% neutral buffered formalin followed by transfer to 70% ethanol. PLoS One 2013; 8(12): e82405.
  8. Otali D., He Q., Stockard C.R. et al. Preservation of immunorecognition by transferring cells from 10% neutral buffered formalin to 70% ethanol. Biotech. Histochem. 2013; 88(3-4): 170-80.
  9. Ibarra J.A., Rogers L.W. Fixation time does not affect expression of HER2/neu: a pilot study. Am. J. Clin. Pathol. 2010; 134(4): 594-6.
  10. Otali D., Stockard C.R., Oelschlager D.K. et al. Combined effects of formalin fixation and tissue processing on immunorecognition. Biotech. Histochem. 2009; 84(5): 223-47.
  11. Maiques O., Santacana M., Valls J. et al. Optimal protocol for PTEN immunostaining; role of analytical and preanalytical variables in PTEN staining in normal and neoplastic endometrial, breast, and prostatic tissues. Hum. Pathol. 2014; 45(3): 522-32.
  12. Webster J.D., Miller M.A., Dusold D. et al. Effects of prolonged formalin fixation on diagnostic immunohistochemistry in domestic animals. J. Histochem. Cytochem. 2009; 57(8): 753-61.
  13. Suzuki Y., Imada T., Yamaguchi I. et al. Effects of prolonged water washing of tissue samples fixed in formalin on histological staining. Biotech. Histochem. 2012; 87(4): 241-8.
  14. Webster J.D., Miller M.A., DuSold D. et al. Effects of prolonged formalin fixation on the immunohistochemical detection of infectious agents in formalin-fixed, paraffin-embedded tissues. Vet. Pathol. 2010; 47(3): 529-35.
  15. Chafin D., Theiss A., Roberts E. et al. Rapid two-temperature formalin fixation. PLoS One 2013; 8(1): e54138.
  16. Engelberg J.A., Giberson R.T., Young L.J. et al. The use of mouse models of breast cancer and quantitative image analysis to evaluate hormone receptor antigenicity after microwave-assisted formalin fixation. J. Histochem. Cytochem. 2014; 62(5): 319-34.
  17. Mareninov S., De Jesus J., Sanchez D. E. et al. Lyophilized brain tumor specimens can be used for histologic, nucleic acid, and protein analyses after 1 year of room temperature storage. J. Neurooncol. 2013; 113(3): 365-73.
  18. Lykidis D., Van Noorden S., Armstrong A. et al. Novel zinc-based fixative for high quality DNA, RNA and protein analysis. Nucleic. Acids Res. 2007; 35(12): e85.
  19. Kamnev A., Muhar M., Preinreich M. et al. Difficulties in generating specific antibodies for immunohistochemical detection of nitrosylated tubulins. PLoS One 2013; 8(6): e68168.
  20. Aydin I., Yörükoglu K., Cingöz S. et al. The effect of the alternative solutions to formaldehyde and xylene on tissue processing. Indian. J. Pathol. Microbiol. 2013; 56(3): 221-30.
  21. Cardiff R. D., Hubbard N. E., Engelberg J. A. et al. Quantitation of fixative-induced morphologic and antigenic variation in mouse and human breast cancers. Lab. Invest. 2013; 93(4): 480-97.
  22. Sujoy V., Nadji M., Morales A.R. Brief formalin fixation and rapid tissue processing do not affect the sensitivity of ER immunohistochemistry of breast core biopsies. Am. J. Clin. Pathol. 2014; 141(4): 522-6.
  23. Nykänen M., Kuopio T. Protein and gene expression of estrogen receptor alpha and nuclear morphology of two breast cancer cell lines after different fixation methods. Exp. Mol. Pathol. 2010; 88(2): 265-71
  24. Fernandez J., Fuentes R. Fixation/permeabilization: new alternative procedure for immunofluorescence and mRNA in situ hybridization of vertebrate and invertebrate embryos. Dev. Dyn. 2013; 242(5): 503-17.
  25. Shi S.R., Cote R.J., Taylor C.R. Antigen retrieval techniques: current perspectives. J. Histochem. Cytochem. 2001; 49(8): 931-7.
  26. Howat W.J., Wilson B.A. Tissue fixation and the effect of molecular fixatives on downstream staining procedures. Methods 2014; 70(1): 12-9.
  27. Thavarajah R., Mudimbaimannar V.K., Elizabeth J. et al. Chemical and physical basics of routine formaldehyde fixation. J. Oral. Maxillofac. Pathol. 2012; 16(3): 400-5.
  28. Paavilainen L., Edvinsson A., Asplund A. et al. The impact of tissue fixatives on morphology and antibody-based protein profiling in tissues and cells. J. Histochem. Cytochem. 2010; 58(3): 237-46.
  29. Benerini Gatta L., Cadei M., Balzarini P. et al. Application of alternative fixatives to formalin in diagnostic pathology. Eur. J. Histochem. 2012; 56(2): e12.
  30. Yamashita-Kashima Y., Shu S., Yorozu K. et al. Importance of formalin fixing conditions for HER2 testing in gastric cancer: immunohistochemical staining and fluorescence in situ hybridization. Gastric. Cancer 2014; 17(4): 638-47.
  31. Neumeister V. M., Anagnostou V., Siddiqui S. et al. Quantitative assessment of effect of preanalytic cold ischemic time on protein expression in breast cancer tissues. J. Natl. Cancer. Inst. 2012; 104(23): 1815-24.
  32. Mueller C., Edmiston K.H., Carpenter C. et al. One-step preservation of phosphoproteins and tissue morphology at room temperature for diagnostic and research specimens. PLoS One 2011; 6(8): e23780
  33. Li X., Deavers M.T., Guo M. et al. The effect of prolonged cold ischemia time on estrogen receptor immunohistochemistry in breast cancer. Mod. Pathol. 2013; 26(1): 71-8.
  34. Portier B.P., Wang Z., Downs-Kelly E. et al. Delay to formalin fixation 'cold ischemia time': effect on ERBB2 detection by in-situ hybridization and immunohistochemistry. Mod. Pathol. 2013; 26(1): 1-9.
  35. Khoury T., Sait S., Hwang H. et al. Delay to formalin fixation effect on breast biomarkers. Mod. Pathol. 2009; 22(11): 1457-67.
  36. Oyama T., Ishikawa Y., Hayashi M. et al. The effects of fixation, processing and evaluation criteria on immunohistochemical detection of hormone receptors in breast cancer. Breast. Cancer. 2007; 14(2): 182-8.
  37. Dvorak K., Aggeler B., Palting J. et al. Immunohistochemistry with the anti-BRAF V600E (VE1) antibody: impact of pre-analytical conditions and concordance with DNA sequencing in colorectal and papillary thyroid carcinoma. Pathology 2014; 46(6): 509-17.
  38. Yildiz-Aktas I.Z. , Dabbs D.J., Bhargava R. The effect of cold ischemic time on the immunohistochemical evaluation of estrogen receptor, progesterone receptor, and HER2 expression in invasive breast carcinoma. Mod. Pathol. 2012; 25(8): 1098-105.
  39. Qiu J., Kulkarni S., Chandrasekhar R. et al. Effect of delayed formalin fixation on estrogen and progesterone receptors in breast cancer: a study of three different clones. Am. J. Clin. Pathol. 2010; 134(5): 813-9.
  40. Uy G.B., Laudico A.V., Carnate J.M.jr et al. Breast cancer hormone receptor assay results of core needle biopsy and modified radical mastectomy specimens from the same patients. Clin. Breast Cancer 2010; 10(2): 154-9.
  41. Burns J.A., Li Y., Cheney C.A. et al. Choice of fixative is crucial to successful immunohistochemical detection of phosphoproteins in paraffin-embedded tumor tissues. J. Histochem. Cytochem. 2009; 57(3): 257-64.
  42. Chidlow G., Daymon M., Wood J.P. et al. Localization of a wide-ranging panel of antigens in the rat retina by immunohistochemistry: comparison of Davidson's solution and formalin as fixatives. J. Histochem. Cytochem. 2011; 59(10): 884-98.
  43. Ramos-Vara J.A., Kiupel M., Baszler T. et al. Suggested guidelines for immunohistochemical techniques in veterinary diagnostic laboratories. J. Vet. Diagn. Invest. 2008; 20(4): 393-413.
  44. Gillespie J.W., Best C.J., Bichsel V.E. et al. Evaluation of nonformalin tissue fixation for molecular profiling studies. Am. J. Pathol. 2002; 160(2): 449-57.
  45. Moelans C.B., ter Hoeve N., van Ginkel J.W. et al. Formaldehyde substitute fixatives. Analysis of macroscopy, morphologic analysis, and immunohistochemical analysis. Am. J. Clin. Pathol. 2011; 136(4): 548-56
  46. Gillard M., Tom W.R., Antic T. et al. Next-gen tissue: preservation of molecular and morphological fidelity in prostate tissue. Am. J. Transl. Res. 2015; 7(7): 1227-35.
  47. Goldmann T., Vollmer E., Gerdes J. What's cooking? detection of important biomarkers in HOPE-fixed, paraffin-embedded tissues eliminates the need for antigen retrieval. Am. J. Pathol. 2003; 163(6): 2638-40.
  48. Delfour C., Roger P., Bret C. et al. RCL2, a new fixative, preserves morphology and nucleic acid integrity in paraffin-embedded breast carcinoma and microdissected breast tumor cells. J. Mol. Diagn. 2006; 8(2): 157-69.
  49. Nassiri M., Ramos S., Zohourian H. et al. Preservation of biomolecules in breast cancer tissue by a formalin-free histology system. BMC Clin. Pathol. 2008; 8: 1.
  50. Klopfleisch R., von Deetzen M., Weiss A.T. et al. Weigners fixative-an alternative to formalin fixation for histology with improved preservation of nucleic acids. Vet. Pathol. 2013; 50(1): 191-9.
  51. Nietner T., Jarutat T., Mertens A. Systematic comparison of tissue fixation with alternative fixatives to conventional tissue fixation with buffered formalin in a xenograft-based model. Virchows. Arch. 2012; 461(3): 259-69.
  52. Gündisch S., Schott C., Wolff C. et al. The PAXgene(®) tissue system preserves phosphoproteins in human tissue specimens and enables comprehensive protein biomarker research. PLoS One 2013; 8(3): e60638
  53. Kap M., Smedts F., Oosterhuis W. et al. Histological assessment of PAXgene tissue fixation and stabilization reagents. PLoS One 2011; 6(11): e27704.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2015


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: 

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах