«Временные окна» для переключения киназно-фосфатазного баланса во время угнетения долговременной потенциации гиппокампальных синапсов амилоидными агрегатами

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Фосфорилирование таргетных белков, осуществляемое протеинкиназами, так же, как и обратный ему процесс дефосфорилирования, опосредуемый фосфатазами, являются важнейшими механизмами регуляции всех клеточных функций в живых клетках. Изменения киназно-фосфатазного баланса (К-Ф баланс) во время прогрессии амилоидозов хорошо известно. В действительности, гиперфосфорилирование структурного тау-белка, ответственное за формирование фибриллярных клубочков по сути представляет собой гиперактивацию каких-либо протеинкиназ и/или сниженную активность каких-либо фосфатаз. Накопленнные к настоящему времени данные показывают двунаправленную регуляцию процессов фосфорилирования/дефосфорилирования во время развития амилоидоз-связанных состояний у разных моделей животных в разных исследовательских протоколах. Поэтому чрезвычайно важной задачей представляется идентификация «временных окон», в которых K-Ф баланс может переключаться.

Полевые постсинаптические потенциалы (фПСП) были записаны от stratum radiatum в СА1 поле гиппокампа с использованием стеклянных микроэлектродов (1–2 MΩ), заполненных регистрирующим раствором. Базальные синаптические ответы вызывались парной стимуляцией с 50 мс интервалом коллатералей Шафера биполярным электродом на частоте 0,033 Гц. Интенсивность тестовой стимуляции была такой, чтобы вызывать фПСП амплитудой 50% от максимальной, и сохранялась на протяжении каждого эксперимента. ДВП вызывалось четырьмя 100 Гц пачками через каждые 5 минут (тетаническая стимуляция). Серин/треониновая фосфатазная активность была измерена с помощью нерадиоактивного индивидуального комплекта (Promega, США) в соответствии с инструкциями производителя. Методика основана на формировании окрашенного комплекса фосфатов с молибденсодержащим красителем, с последующем измерением оптической плотности инкубированных супернатантов против контроля на 640 нм. Прямое измерение активности протеинкиназы С (ПКС) было проведено иммуноферментным анализом на планшетном ридере с помощью коммерческого набора (Abcam, США). Методика основана на связывании рекомбинантных антител с активированной ПКС и измерении оптической плотности инкубированных супернатантов против контроля на 450 нм.

В данной работе мы обнаружили два критических «временных окна» при действии агрегатов амилоидного пептида Aβ25-35 на пластичность СА3-СА1 синапсов в срезах гиппокампа крыс. В течение старта Aβ25-35-вызванных нейрохимических изменений (0–20 минут инкубации срезов в присутствии агрегатов Aβ25-35) происходит активация изоформ ПКС. Если гиппокампальные СА3-СА1 синапсы тетанизировать в этот момент, в дальнейшем не обнаруживается никакого ингибирования долговременной потенциации ни в ранней, ни в поздней фазе её развития. Биохимический анализ показывает индукции ПКС активности в срезах, предобработанных агрегатами Aβ25-35 в течение 20–30 минут, но не после часовой инкубации. В то же время инкубация гиппокампальных срезов в присутствии Aβ25-35 агрегатов в течение часа всегда приводила к исчезновению долговременной потенциации в поздней фазе её развития (спустя 3 часа после индукции тетануса). Ингибиторный анализ показал, что сильное увеличение активности стресс-индуцируемой фосфатазы 1α (PP1α), которая интерферирует киназо-опосредуемые сигналы после индукции долговременной потенциации, ответственно за подавление синаптической пластичности в СА3-СА1 синапсов после инкубации с агрегатами Aβ25-35. Совместно, эти данные указывают на то, что после 20–30-минутной инкубации срезов гиппокампа в присутствии агрегатов Aβ25-35 киназно-фосфатазный баланс смещается в сторону усиления киназной активности за счёт активации изоформ ПКС. Большинство изоформ ПКС характеризуются способностью десенсетизироваться после активации. Вероятно, истощение пула неактивированных ПКС, которое случается в течение 20–30 минут после старта инкубации срезов гиппокампа с агрегатами Aβ25-35, а также существенное увеличение активности стресс-индуцируемой фосфатазы PP1α ответственны за второе «временное окно» переключения киназно-фосфатазного баланса в СА3-СА1 синапсах, которое стабильно детектируется после 60-минутной инкубации срезов с агрегатами Aβ25-35.

Таким образом, инкубация срезов гиппокампа в присутствии агрегатов Aβ25-35 (0–30 минут) сначала смещает К-Ф баланс в сторону усиления киназной активности за счёт активации ПКС, а через 60 минут после старта инкубации срезов с амилоидом наблюдается переключение К-Ф баланса в сторону процессов дефосфорилирования за счёт активации стресс-индуцируемой PP1α и, по-видимому, за счёт истощения пула неактивированных ПКС изоформ.

Полный текст

Фосфорилирование таргетных белков, осуществляемое протеинкиназами, так же, как и обратный ему процесс дефосфорилирования, опосредуемый фосфатазами, являются важнейшими механизмами регуляции всех клеточных функций в живых клетках. Изменения киназно-фосфатазного баланса (К-Ф баланс) во время прогрессии амилоидозов хорошо известно. В действительности, гиперфосфорилирование структурного тау-белка, ответственное за формирование фибриллярных клубочков по сути представляет собой гиперактивацию каких-либо протеинкиназ и/или сниженную активность каких-либо фосфатаз. Накопленнные к настоящему времени данные показывают двунаправленную регуляцию процессов фосфорилирования/дефосфорилирования во время развития амилоидоз-связанных состояний у разных моделей животных в разных исследовательских протоколах. Поэтому чрезвычайно важной задачей представляется идентификация «временных окон», в которых K-Ф баланс может переключаться.

Полевые постсинаптические потенциалы (фПСП) были записаны от stratum radiatum в СА1 поле гиппокампа с использованием стеклянных микроэлектродов (1–2 MΩ), заполненных регистрирующим раствором. Базальные синаптические ответы вызывались парной стимуляцией с 50 мс интервалом коллатералей Шафера биполярным электродом на частоте 0,033 Гц. Интенсивность тестовой стимуляции была такой, чтобы вызывать фПСП амплитудой 50% от максимальной, и сохранялась на протяжении каждого эксперимента. ДВП вызывалось четырьмя 100 Гц пачками через каждые 5 минут (тетаническая стимуляция). Серин/треониновая фосфатазная активность была измерена с помощью нерадиоактивного индивидуального комплекта (Promega, США) в соответствии с инструкциями производителя. Методика основана на формировании окрашенного комплекса фосфатов с молибденсодержащим красителем, с последующем измерением оптической плотности инкубированных супернатантов против контроля на 640 нм. Прямое измерение активности протеинкиназы С (ПКС) было проведено иммуноферментным анализом на планшетном ридере с помощью коммерческого набора (Abcam, США). Методика основана на связывании рекомбинантных антител с активированной ПКС и измерении оптической плотности инкубированных супернатантов против контроля на 450 нм.

В данной работе мы обнаружили два критических «временных окна» при действии агрегатов амилоидного пептида Aβ25-35 на пластичность СА3-СА1 синапсов в срезах гиппокампа крыс. В течение старта Aβ25-35-вызванных нейрохимических изменений (0–20 минут инкубации срезов в присутствии агрегатов Aβ25-35) происходит активация изоформ ПКС. Если гиппокампальные СА3-СА1 синапсы тетанизировать в этот момент, в дальнейшем не обнаруживается никакого ингибирования долговременной потенциации ни в ранней, ни в поздней фазе её развития. Биохимический анализ показывает индукции ПКС активности в срезах, предобработанных агрегатами Aβ25-35 в течение 20–30 минут, но не после часовой инкубации. В то же время инкубация гиппокампальных срезов в присутствии Aβ25-35 агрегатов в течение часа всегда приводила к исчезновению долговременной потенциации в поздней фазе её развития (спустя 3 часа после индукции тетануса). Ингибиторный анализ показал, что сильное увеличение активности стресс-индуцируемой фосфатазы 1α (PP1α), которая интерферирует киназо-опосредуемые сигналы после индукции долговременной потенциации, ответственно за подавление синаптической пластичности в СА3-СА1 синапсов после инкубации с агрегатами Aβ25-35. Совместно, эти данные указывают на то, что после 20–30-минутной инкубации срезов гиппокампа в присутствии агрегатов Aβ25-35 киназно-фосфатазный баланс смещается в сторону усиления киназной активности за счёт активации изоформ ПКС. Большинство изоформ ПКС характеризуются способностью десенсетизироваться после активации. Вероятно, истощение пула неактивированных ПКС, которое случается в течение 20–30 минут после старта инкубации срезов гиппокампа с агрегатами Aβ25-35, а также существенное увеличение активности стресс-индуцируемой фосфатазы PP1α ответственны за второе «временное окно» переключения киназно-фосфатазного баланса в СА3-СА1 синапсах, которое стабильно детектируется после 60-минутной инкубации срезов с агрегатами Aβ25-35.

Таким образом, инкубация срезов гиппокампа в присутствии агрегатов Aβ25-35 (0–30 минут) сначала смещает К-Ф баланс в сторону усиления киназной активности за счёт активации ПКС, а через 60 минут после старта инкубации срезов с амилоидом наблюдается переключение К-Ф баланса в сторону процессов дефосфорилирования за счёт активации стресс-индуцируемой PP1α и, по-видимому, за счёт истощения пула неактивированных ПКС изоформ.

×

Об авторах

А. В. Мальцев

Институт высшей нервной деятельной и нейрофизиологии Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: malat_88@mail.ru
Россия, Москва

П. М. Балабан

Институт высшей нервной деятельной и нейрофизиологии Российской академии наук

Email: malat_88@mail.ru
Россия, Москва

Список литературы

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Эко-Вектор, 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: 

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах