Роль миграционной оси SDF-1-CXCR4 в хоуминге клеток-предшественников и метастазировании злокачественных опухолей

Обложка
  • Авторы: Григорян А.С.1
  • Учреждения:
    1. Санкт-Петербургский Государственный университет
  • Выпуск: Том 1, № 4 (2006)
  • Страницы: 32-38
  • Раздел: Обзоры
  • Статья получена: 26.01.2023
  • Статья одобрена: 26.01.2023
  • Статья опубликована: 15.12.2006
  • URL: https://genescells.ru/2313-1829/article/view/139097
  • ID: 139097

Цитировать

Полный текст

Аннотация

В обзоре представлены современные данные о молекулярных механизмах миграции и колонизации тканей и органов стволовыми клетками, клетоками-предшественниками. В научной литературе большое внимание в данном направлении придается значению недавно описанных молекул фактору стромальных клеток {SOF-1) и его рецептору {CXCR4).

Ключевые слова

Полный текст

Роль миграционной оси SDF-1-CXCR4 в хоуминге клеток-предшественников и метастазировании злокачественных опухолей *

Введение

Адекватный ответ нормальных стволовых клеток, как эмбриональных, так и дефинитивных тканей, на морфогенетические факторы и хемоаттрактанты играет ключевую роль в развитии органов в онтогенезе, а также в процессах обновления тканей и их регенерации в случае повреждений. Помимо этого, хемоаттрактанты регулируют метастазирование опухолевых стволовых клеток, которые, как было недавно показано, образуются в результате блокирования дифференцировки стволовых клеток, а не дедифференцировки дефинитивных соматических клеток, как предполагалось ранее [1]. В последнее время появляется всё больше экспериментальных свидетельств того, что как нормальные, так и опухолевые стволовые клетки экспрессируют на своей мембране ассоциированный с гетеротримерными G-белками трансмембранный рецептор CXCR4, связывающийся со специфическим лигандом молекулой SDF-1 (stromal derived factor), которая вырабатывается стромальными клетками многих тканей. Экспрессия как SDF-1, так и его рецептора повышается при гипоксии и механических травмах, что приводит к усиленной миграции клеток-предшественников в зоны повреждения. По этой причине растёт интерес исследователей к разработкам новых фармакологических подходов, направленных на модуляцию миграционной оси SDF-1-CXCR4. В будущем это может позволить стимулировать хоуминг нормальных CXCR4+ стволовых клеток в повреждённые органы, а также предотвратить метастазирование CXCR4+ опухолевых клеток.

Stromal derived factor (SDF-1/CXCL12)

В настоящее время наиболее хорошо изученным фактором хоуминга стволовых и прогениторных клеток костного мозга является белок SDF-1/CXCL12, относящийся к хемокинам (обширная группа консервативных, мультифункциональных низкомолекулярных медиаторов, которые могут опосредовать иммунный ответ, выживание стволовых клеток, а также запускать хемотаксис и ангиогенез [2-5]) семейства CXC. Этот фактор существует в организме в виде двух различных белков со сходными функциями, образующихся в результате альтернативного сплайсинга: SDF-1a и SDF-1b, и в трёх формах: мембранной, связанной с экстрацеллюлярным матриксом и растворимой.

Впервые кДНК SDF-1a была клонирована в 1988 году группой S.I. Nishikawa et al. [6], а в 1996 году C.C. Bleul et al. обнаружили, что SDF-1 является хемоаттрактантом для лейкоцитов, под его влиянием происходит перестройка их цитоскелета [7].

К настоящему времени клонировано 50 различных хемокинов и 20 хемокиновых рецепторов [8, 9]. Обычно один и тот же хемокин может связываться с несколькими разными рецепторами, но SDF-1 исключение из этого правила. Он способен взаимодействовать только с CXCR4 (по CD-номенклатуре: CD184), что косвенно подчёркивает его уникальную биологическую роль [10]. Совсем недавно был описан новый рецептор SDF-1, названный RDC1, однако его возможная роль в регуляции миграции клеток ещё не подтверждена [1].

SDF-1 имеет ряд различных функций, в которые входят ингибирование апоптоза, стимуляция пролиферации, усиление адгезии, подвижности клеток, хемотаксиса и миграции. Он работает как во взрослом организме, так и на ранних этапах онтогенеза, участвуя в перемещении гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) из аорто-гонадо-мезонефрального компартмента зародыша в желточный мешок, а затем в эмбриональную печень и далее в костный мозг и селезёнку. При этом ГСК мигрируют по градиенту SDF-1a, что усиливается в присутствии Steel factor (SLF) [11]. Таким образом, SDF-1 можно назвать одним из самых важных морфогенетических факторов и хемоаттрактантов для всех типов CXCR4+ клеток в онтогенезе организма (рис. 1).

 

Рис. 1. Роль оси SOF-1-CXCR-4 в миграции и циркуляции стволовых клеток, и при метастазировании опухолевых клеток. По [49] с изменениями

 

SDF-1 секретируется, главным образом, стромальными фибробластами костного мозга [12], но также обнаруживается в клетках различных тканей, таких как поперечнополосатая и сердечная мышечные, нервные клетки, спленоциты и гепатоциты [13].

Количество мРНК SDF-1 резко возрастает в повреждённой сердечной мышечной ткани, почках и печени (в экспериментах были проверены воздействия на органы гипоксии и g-излучения), в результате чего CXCR4+ клетки периферической крови рекрутируются в область повреждения [14]. А.T. Askari et al. (2003) показали, что после инфаркта миокарда уровень экспрессии SDF-1 клетками сердечной мышцы стремительно возрастает и снижается только к седьмым сутками. Проверив влияние трансплантации клеток, трансфецированных геном SDF-1, на хоуминг CD34+ c-kit+ стволовых клеток костного мозга в зону повреждения, исследователи выяснили, что этого достаточно для мобилизации стволовых клеток (СК), однако их последующей дифференцировки в кардиомиоциты практически не происходило. Предполагается, что главную роль в дальнейшей дифференцировке клеток играют факторы семейства TGFb. Тем не менее, сосредоточение клеток в зоне повреждения приводит к развитию новых сосудов и улучшению сердечной деятельности [15].

Хемотаксис по градиенту концентрации SDF-1 демонстрируют около 18% мононуклеарных клеток костного мозга и примерно 22% мононуклеаров селезёнки, которая также является «резервуаром» CXCR4+ клеток-предшественников [14].

Рецептар SDF-1 трансмембранный белак CXCR4

В 1996 году С.С. Bleul et al. [3] и Е. Oberlin et al. [16] независимо друг от друга обнаружили, что рецептором для SDF-1 является белок LЕSTR/fusin, или CXCR4 (по номенклатуре хемокиновых рецепторов), участвующий в слиянии Т-тропного вируса иммунодефицита человека с CD4+ лимфоцитами хозяина. Несколькими годами позже, в 1999 году, A. Peled et al. [17] показали, что SDF-1 и его рецептор задействованы в репопуляции костного мозга SCID мышей, в то время как антитела к CXCR4 блокируют хоуминг трансплантированных клеток.

Молекула CXCR4 имеет семь трансмембранных доменов, каждый из которых играет свою роль в запуске каскада сигналов, и ассоциирована с Gai-белком, что позволяет ей передавать сигнал в ядро клетки [18].

CXCR4 маркер многих стволовых/прогениторных клеток [12]. Экспрессия функционального CXCR4 обнаружена на миосателлитах поперечнополосатой мускулатуры [19, 20], примордиальных клетках гонад зародыша [21, 22], нейральных стволовых клетках [23], а также на предшественниках пигментных клеток сетчатки и на гепатоцитах [24, 25]. Известно, что ось SDF-1-CXCR4 регулирует миграцию и хоуминг пре-В-лимфоцитов (кроме того, CXCR4 является фактором роста пре-В-клеток) и Т-лимфоцитов, а также эмбриональных стволовых клеток мыши [26]. CXCR4 экспрессируется на глиальных клетках и нейронах, а SDF-1 выступает важным фактором роста астроцитов, стимулируя их пролиферацию [27].

Совсем недавно была обнаружена экспрессия CXCR4 на мультипотентных мезенхимных стромальных клетках (ММСК) костного мозга. На мембранах клеток он присутствовал в очень незначительном количестве (им обладало от 1% до 3% клеток), тем не менее, он играл определенную роль в их миграции: при блокировании CXCR4 моноклональными антителами, процент мигрировавших клеток снизился примерно на 50%. Интересно, что при этом от 83% до 98% ММСК содержали рецептор в цитоплазме, причём в двух формах: в «обычной» (весом 66 КДа) и в N-гликозилированной (весом 130 КДа). Функционально активна N-гликозилированная форма, и при инактивации/расщеплении N-терминального пептида рецептор, оказавшийся на мембране, теряет свою активность [28].

Несмотря на то, что клетки повреждённых тканей секретируют в большом количестве SDF-1, привлекая прогениторные клетки, среда в зоне повреждения, богатая протеолитическими ферментами, такими, как сериновые протеазы, катепсин G, эластазы и матриксные металлопротеиназы, может нарушать нормальный хоуминг клеток, расщепляя N-терминальный пептид CXCR4. Предполагается, что нахождение способа стимуляции выхода внутриклеточного CXCR4 на мембрану клетки может стать ответом на вопрос, каким образом усилить хоуминг и миграцию МСК в костном мозге [28].

CXCR4 экспрессируют клетки ряда опухолей, таких как рабдомиосаркома, нейробластома, глиобластома, нефробластома, гепатобластома и ретинобластома. Хорошо развитая система кровоснабжения костного мозга и экспрессия клетками стромы SDF-1 и ряда других хемоаттрактантов делает костный мозг «мишенью» для метастазов опухолей, экспрессирующих на своей поверхности CXCR4 [29-34]. Все эти опухоли развиваются из малодифференцированных мышечных, нейральных, клеток почечного эпителия, пигментных клеток сетчатки и гепатоцитов это позволяет предположить, что их метастазы мигрируют именно по градиенту SDF-1.

Гиперэкспрессия гена CXCR4 была обнаружена в более чем 75% опухолей различного происхождения, неполный список которых включает рак молочной железы, яичников, лёгких, кишечника, простаты, пищевода, почек, поджелудочной железы, меланому, некоторые формы лейкоза.

Клетки ряда опухолей секретируют молекулы, повышающие экспрессию CXCR4 и SDF-1. Например, клетки глиобластомы, экспрессируя в больших количествах VЕGF (vascular endothelial growth factor), стимулируют не только ангиогенез, но и экспрессию CXCR4, что позволяет опухоли активно метастазировать. Медиана выживаемости пациентов с такой CXCR4+high опухолью составляет менее одного года [35].

Экспериментальные животные, нокаутные по генам SDF-1 и CXCR4, погибают in utero, демонстрируя сильно сниженное количество гемопоэтических стволовых клеток в костном мозге. Эти животные имеют множественные пороки развития сердечно-сосудистой системы и головного мозга [36, 37]. Такие последствия дефектов генов SDF-1 и CXCR4 предполагают ключевую роль миграционной оси SDF-1-CXCR4 в органогенезе и миграционных процессах самых различных клеток в норме и при патологии.

Регуляция миграцианнай оси SDF-1-CXCR4

Для лучшего понимания запуска SDF-1-CXCR4 сигналинга нужно отметить, что хемотаксис и хоуминг (по крайней мере, ГСК) зависит от содержания в мембранах клеток холестерина и включения в подвижные участки мембраны, обогащённые гликосфинголипидами, сфингомиелином и холестерином (рафты) CXCR4 и малой ГТФазы Rac-1 [38]. Такая близкая локализация рецептора и ГТФазы облегчает активацию Rac-1 и запуск дальнейшей последовательности событий [39]. По этой причине CXCR4 может быть сенситизирован факторами лейкафереза/мобилизации, которые, повышая его ассоциацию с рафтами, позволяют ему более тонко реагировать на градиент SDF-1. Возможно, именно этим объясняется то, что ГСК при мобилизации из костного мозга демонстрируют более высокую степень энграфтмента, чем ГСК пуповинной крови [38]. Препараты, нарушающие формирование липидных рафтов мембраны (например, полиеновые антибиотики) могут препятствовать метастазированию CXCR4+ опухолей, также как и агенты, нарушающие внутриклеточный синтез холестерина (напр., статины) (рис. 2).

 

Рис. 2. Модуляция оси SDF-1-CXCR4 внешними факторами. По [49] с изменениями

 

В некоторых клетках CXCR4-сигналинг зависит от концентрации SDF-1a. Так, в низких концентрациях (около 100 нг/мл) SDF-1 усиливает миграцию Т-лимфоцитов, в высоких же не только снижает, но и служит для клеток репеллентом [40]. Такая же закономерность выявляется и для CD34+ гемопоэтических клеток, способность которых к хоумингу в костный мозг NOD/SCID реципиентов в присутствии высоких концентраций SDF-1 (50 мкг/106 клеток) заметно снижается [41, 42]. Предварительная инкубация клеток с SDF-1 или антителами к CXCR4 (в исследованиях использовался клон 12G5) перед их трансплантацией реципиенту усиливает последующий ответ клеток на SDF-1 примерно вдвое, не влияя на пролиферацию и апоптоз. Это происходит благодаря тому, что предварительная инкубация с SDF-1 повышает уровень фосфорилирования сигнальных молекул, стимулирует реорганизацию актинового цитоскелета и увеличивает адгезию клеток через молекулы VLA-4 и VCAM [43-45]. Обработка гемопоэтических клеток SDF-1 в течение двух-трёх дней приводит к усилению активности металлопротеиназ, а также повышает выживаемость. При этом SDF-1 никак не влияет на прохождение клетками клеточного цикла [46]. Возможно, такая зависимость от концентрации лиганда проявляется в результате работы различных сигнальных механизмов, зависящих от разных концентраций SDF-1.

Функции SDF-1/CXCR4 осуществляются посредством вторичных мессенджеров, активируемых вслед за Gai-белком. Считается, что SDF-1, связавшись с CXCR4, вызывает его димеризацию, как это происходит, например, в случае рецепторов факторов роста [47]. После этого активированный комплекс CXCR4-SDF-1 быстро интернализуется (уходит в цитоплазму в составе мембранного пузырька) [48]. Интернализованный CXCR4 может затем вновь выйти на поверхность клетки и выполнять там свои функции. Установлено, что интернализацию комплекса SDF-1-CXCR4 можно ингибировать гепарином, ограничивающим количество доступного

SDF-1, и липополисахаридом бактерий, который напрямую ингибирует контакт SDF-1 с рецептором [49]. Также интернализация ингибируется при связи L-селектина на поверхности клетки с фукоиданом и сульфатидом, являющимися селектин-связывающими лигандами [50]. Эндоцитоз CXCR4 может быть необходим не только для регуляции сигналинга, но и для хемотаксиса и запуска MЕK-MAPK р42/44 киназного каскада [33, 34].

При взаимодействии SDF-1 с его рецептором в клетке на короткое время возрастает опосредованная работой малой ГТФазы Rho концентрация Ca2+, необходимая для перестройки цитоскелета (увеличения количества F-актина в цитоплазме), формирования фокальных контактов и миграции.

Повышение концентрации Ca2+ в клетке активирует пролин-богатую киназу-2 (Pyk-2), киназу фокальной адгезии (FAK), и ряд других значимых молекул, запуская сигнальные пути через MAPK р42/44-ЕLK-1 и PI-3K-AKT-NF-кB [52-55]. После связывания CXCR4 немедленно обнаруживается резкое повышение степени фосфорилирования компонентов фокальной адгезии, MAPK р42/44 и серин-треониновой киназы AKT [56, 57].

CXCR4 сигналинг включает также активацию Ras (один из наиболее распространённых протоонкогенов) и нескольких киназ семейства Src, в том числе ZAP-70 молекулу, активирующую Т-клетки. Некоторые могут активироваться, возможно, посредством трансфосфорилирования, независимо от Gai белка, после чего в процесс передачи сигнала могут вовлекаться транскрипционные факторы семейства STAT, которые далее тоже фосфорилируются киназами [58]. STAT-белки, привлекаемые в процессе сигналинга, строго тканеспецифичны [47].

Существуют весомые аргументы в пользу того, что в модуляцию CXCR4-индуцированного сигналинга включены также протеин-тирозиновые фосфатазы SHIP1 и SHIP2, а также гемопоэтическая мембран-ассоциированная фосфатаза CD45 (рис. 3).

 

Рис. 3. Пути передачи сигнала, активируемые осью SDF-1-CXCR4. По [49] с изменениями

 

Нельзя забывать о том, что большинство механизмов проведения сигнала в клетке многократно дублируется, и путь запуска хоуминга и миграции клеток через связывание SDF-1 с CXCR4 не исключение. Показано, что при ингибировании CXCR4 хоуминг ГСК не нарушается благодаря компенсации выключения SDF-1-CXCR4 пути взаимодействием a4-интегрина с VCAM-1 (при проведении схожих экспериментов с лейкозными клетками было выяснено, что их хоуминг при блокаде CXCR4 нарушается). При блокировании же обоих этих механизмов хоуминг клеток значительно снижался или практически отсутствовал. По-видимому, других значимых

«обходных путей» SDF-1/CXCR4 клетка не имеет [59].

На взаимодействие SDF-1 с его рецептором влияет множество факторов, в том числе и цитокиновое микроокружение клетки. Установлено, что воздействие SCF (Stem Cell Factor) повышает экспрессию CXCR4 клетками стромы костного мозга и усиливает миграцию по крайней мере c-kit+ клеток.

Такие факторы, как анафилотоксин C3a (фрагмент токсина, расщепляющий С3 компонент комплемента), des-ArgС3а (продукт расщепления С3а карбоксипептидазой), фибронектин, фибриноген, тромбин, VCAM-1, гиалуроновая кислота и сфингозин-1-фосфат усиливают хемотаксис CXCR4+ клеток по градиенту SDF-1 [49, 60, 61]. Из этого, опять же, следует, что ось SDF-1-CXCR4 в значительной степени регулируется соединениями, высвобождающимися при повреждении тканей (des-ArgС3а, С3а анафилотоксин, фибронектин, гиалуроновая кислота), коагуляции крови (фибриноген, тромбин) и активации клеток (s-VCAM-1, s-ICAM-1). Воспаление тесно связано с прогрессией опухолей, что можно объяснить влиянием воспалительных молекул (С3а, фибриногена, фибронектина, гиалуроновой кислоты) на усиление метастазирования CXCR4+ опухолей.

Подводя итог, заметим, что в настоящее время о сигнальных путях в клетке можно с известной долей уверенности сказать, что «всё связано со всем»: функции белков разнообразны, и часто один и тот же белок в зависимости от своего местонахождения в клетке может играть совершенно противоположные роли. Однако тонкая регуляция клеточных процессов обеспечивает дифференциальный запуск различных сигнальных путей, и в разных клеточных линиях задействуются разные молекулы.

Терапевтические подходы к воздействию на миграционную ось SDF-1-CXCR4

В связи с развитием методов клеточной терапии и необходимостью управления миграцией трансплантированных клеток, развиваются и представления исследователей о роли факторов хоуминга как в здоровом организме, так и при патологии, в особенности при развитии опухолей. Помимо этого, CXCR4 является корецептором для Т-тропного вируса иммунодефицита человека (ВИЧ), взаимодействуя с белком вирусного капсида gр120 и облегчая проникновение вириона в клетку хозяина, что также не может не привлекать повышенного внимания к этой молекуле.

Сегодня CXCR4 потенциальная мишень борьбы с опухолями. Доказано, что рецептор играет важную роль на всех стадиях прогрессии опухоли: пролиферации клеток первичной опухоли, их метастазировании. Недавно компания Northwest Biotheraрeutics (NWBT) на трёх моделях различных злокачественных опухолей провела клинические испытания нового моноклонального антитела к CXCR4. Эти исследования были призваны проверить, как повлияет блокада рецептора на течение заболевания. Результаты подтвердили сильное влияние антител к CXCR4 на все стадии развития опухоли:

  • Медиана выживаемости удвоилась; 95% животных, участвовавших в эксперименте, прожили более чем 110 дней, при этом средняя выживаемость в контрольной группе не превышала 45 дней.
  • Количество метастазов в лёгких уменьшилось на 75%.
  • Размер первичной опухоли молочной железы снизился на 60%.

«Редко бывает так, что один белок играет важную роль на всех трёх функциональных стадиях развития раковых клеток, не говоря уже о его участии в течении нескольких различных видов рака», утверждает профессор Алтон Бойнтон (Alton Boynton) из Northwest Biotheraрeutics, «CXCR4 предлагает исключительную терапевтическую возможность как для предотвращения роста первичной опухоли, так и её метастазирования. И, что самое важное, эффект антител к CXCR4 коррелирует с заметным увеличением продолжительности жизни. Зачастую препараты, замедляющие опухолевый рост, не увеличивают медиану выживаемости больных раком. Результаты доклинических испытаний моноклональных антител к CXCR4 позволяют нам начать первую фазу клинических испытаний» [62].

Гиперэкспрессия CXCR4 обнаруживается более чем в 75% опухолей различного типа. Более того, экспрессия CXCR4 коррелирует с низким уровнем выживаемости.

Компанией AnorMЕD Inc. был также разработан препарат AMD3100 антагонист CXCR4. Этот агент предполагается использовать для мобилизации ГКС. При использовании AMD3100 совместно с Г-КСФ наблюдается синергетический эффект. В настоящее время препарат завершает вторую фазу клинических испытаний [63].

Таким образом, миграционная ось SDF-1-CXCR4 задействуется при множестве типов опухолей и агенты, влияющие как на лиганд, так и на рецептор, могут сыграть в будущем значительную роль в терапии злокачественных заболеваний.

 

* По материалам Kucia M., Reca R., Miekus K., Wanzeck J. Trafficking of Normal Stem Cells and Metastasis of Cancer Stem Cells Involve Similar Mechanisms: Pivotal Role of the SDF-1 CXCR4 Axis. Stem Cells 2005; 23: 879-94.

×

Об авторах

А. С. Григорян

Санкт-Петербургский Государственный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: redaktor@celltranspl.ru
Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Chute J.P. Stem Cell homing. Current Opinion in Hematology 2006; 13: 399-406.
  2. Zlotnik A., Yoshie O. Chemokines: a new classification system and their role in immunity. Immunity 2000; 12: 121-7.
  3. Rossi D., Zlotnik A. The biology of chemokines and their receptors. Annu. Rev. Immunol. 2000; 18: 217-42.
  4. Aiuti A., Webb I.J., Bleul C. et al. The chemokine SDF-1 is a chemoattractant for human CD34+ hematopoietic progenitor cells and provides a new mechanism to explain the mobilization of CD34+ progenitors to peripheral blood. J. Exp. Med. 1997; 185: 111-20.
  5. Strieter R.M., Belperio J.A., Keane M.P. CXC chemokines in angiogenesis related to pulmonary fibrosis. Chest 2000; 122: 298SŒ301S.
  6. Nishikawa S.I., Ogawa M., Nishikawa S. et al. B lymphopoiesis on stromal cell clone: stromal cell clones acting on different stages of B cell differentiation. Europ. J. Immunol. 1988; 18: 1767-71.
  7. Bleul C.C., Farzan M., Choe H. et al. The lymphocyte chemoattractant SDF-1 is a ligand for LESTR/fusin and blocks HIV-1 entry. Nature 1996; 382: 829-33
  8. Zlotnik A., Yoshie O. Chemokines: a new classification system and their role in immunity. Immunity 2000; 12: 121-7.
  9. Horuk R. Chemokine receptors. Cytokine Growth Factor Rev. 2001; 12: 313-35.
  10. Nagasawa T., Hirota S., Tachibana K. et al. Defects of B-cell lymphopoiesis and bone-marrow myelopoiesis in mice lacking the CXC chemokine PBSF/SDF- 1. Nature 1996; 382: 635-8.
  11. Christensen J.L., Wright D.E., Wagers A.J., Weissman I.L. Circulation and Chemotaxis of Fetal Hematopoietic Stem Cells. Plos. Biol. 2004; 2: 0368-77.
  12. Kijowski J., Baj M., Majka M. et al. The SDF-1ŒCXCR4 axis stimulates VEGF secretion and activates integrins but does not affect proliferation and survival in lymphohematopoietic cells. Stem Cells 2001; 19: 453-66.
  13. Ratajczak M.Z., Kucia M., Reca R. et al. Stem Cell plasticity revisited: CXCR4-positive cells expressing mRNA for arly muscle, liver and neural cells «hide out» in the bone marrow. Leukemia 2004; 18: 29-40.
  14. Kucia M., Zhang Y.P., Wysoczynski M. et al. Cells enriched in markers of neural tissue-committed stem cells reside in the bone marrow and are mobilized into the peripheral blood following stroke. Leukemia 2006; 20(1): 18-28.
  15. Askari A.T., Unzek S., Popovic Z.B. et al. Effect of stromal-cell-derived factor 1 on stem-cell homing and tissue regeneration in ischaemic cardiomyopathy. The Lancet 2003; 362: 697-703.
  16. Oberlin E., Amara A., Bachelerie F. et al. The CXC chemokine SDF-1 is the ligand for LESTR/fusin and prevents infection by T-cell-line-adapted HIV-1. Nature 1996; 382: 833-5.
  17. Peled A., Petit I., Killet O. et al. Dependence of human stem cell engraftment and repopulation of NOD/SCID mice on CXCR4. Science 1999; 283: 845-8.
  18. Hirayama F., Yamaguchi M., Yano M. et al. Spontaneous and rapid reexpression of functional CXCR4 by human steady-state peripheral blood CD34+ cells. J. Hematol. 2003; 78: 48-55.
  19. Ratajczak M.Z., Majka M., Kucia M. et al. Expression of functional CXCR4 by muscle satellite cells and secretion of SDF-1 by muscle-derived fibroblasts is associated with the presence of both muscle progenitors in bone marrow and hematopoietic stem/progenitor cells in muscles. Stem Cells 2003; 21: 363-71.
  20. Pituch-Noworolska A., Majka M., Janowska-Wieczorek A. et al. Circulating CXCR4-positive stem/progenitor cells compete for SDF-1-positive niches in bone marrow, muscle and neural tissues: an alternative hypothesis to stem cells plasticity. Folia Histochem. Cytobiol. 2003; 41: 13Œ21.
  21. Ara T., Nakamura Y., Egawa T. et al. Impaired colonization of the gonads by primordial germ cells in mice lacking a chemokine stromal cell-derived factor-1 (SDF-1). Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2003; 100: 5319-23.
  22. Doitsidou M., Reichman-Fried M., Stebler J. et al. Guidance of primordial germ cell migration by the chemokine SDF-1. Cell 2002; 111: 647-59.
  23. Reiss K., Mentlein R., Sievers J., Hartmann D. Stromal cell-derived factor 1 is secreted by meningeal cells and acts as chemotactic factor on neuronal stem cells of the cerebellar external granular layer. Neuroscience 2002; 115: 295-305.
  24. Crane I.J., Wallace C.A., McKillop-Smith S., Forrester J.V. CXCR4 receptor expression on human retinal pigment epithelial cells from bloodŒretina barrier leads to chemokine secretion and migration in response to stromal cell-derived factor 1a. J. Immunol. 2000; 165: 4372-8.
  25. Hatch H., Zheng D., Jorgensen M.L., Petersen B.E. SDF-1a/CXCR4: a mechanism for hepatic oval cell activation and bone marrow stem cell recruitment to the injured liver of rats. Cloning Stem Cells 2002; 4: 339-51.
  26. Aiuti A., Webb I.J., Bleul C. et al. The chemokine SDF-1 is a chemoattractant for human CD34+ hematopoietic progenitor cells and provides a new mechanism to explain the mobilization of CD34+ progenitors to peripheral blood. J. Exp. Med. 1997; 185: 111Œ20.
  27. Bonavia R., Bajetto A., Barbero S. et al. Chemokines and their receptors in the CNS: expression of CXCL12/SDF-1 and CXCR4 and their role in astrocyte proliferation. Toxicology Letters 2003; 139: 181-9.
  28. Wynn R.F., Hart C.A., Corradi-Perini C. et al. A small proportion of mesenchymal stem cells strongly express functionally active CXCR4 receptor capable of promoting migration to bone marrow. Blood 2004; 104(9): 2643-5.
  29. Muller A., Homey B., Soto H. et al. Involvement of chemokine receptors in breast cancer metastasis. Nature 2001; 410: 50-6.
  30. Cooper C.R., Chay C.H., Gendernalik J.D. et al. Stromal factors involved in prostate carcinoma metastasis to bone. Cancer 2003; 97: 739-47.
  31. Ellis W.J., Pfitzenmaier J., Colli J. et al. Detection and isolation of prostate cancer cells from peripheral blood and bone marrow. Urology 2003; 61: 277-81.
  32. Petersen B.E., Bowen W.C., Patrene K.D. et al. Bone marrow as a potential source of hepatic oval cells. Science 1999; 284: 1168-70.
  33. Libura J., Drukala J., Majka M. et al. CXCR4ŒSDF-1 signaling is active in rhabdomyosarcoma cells and regulates locomotion, chemotaxis and adhesion. Blood 2002; 100: 2597-606.
  34. Geminder H., Sagi-Assif O., Goldberg L. et al. A possible role for CXCR4 and its ligand the CXC chemokine stromal cell-derived factor-1 in the development of bone marrow metastasis in neuroblastoma. J. Immunol. 2001; 167: 4747-57.
  35. Hong X., Jiang F., Kalkanis S.N. et al. SDF-1 and CXCR4 are up-regulated by VEGF and contribute to glioma cell invasion. Cancer Letters 2005; 236(1): 1-7.
  36. Zou Y., Kottmann A.H., Kuroda M. et al. Function of the chemokine receptor CXCR4 in haematopiesis and in cerebellar development. Nature 1998; 393: 595-9.
  37. Tachibana K., Hirota S., Lizasa H. et al. The chemokine receptor CXCR4 is essential for vascularization of the gastrointestinal tract. Nature 1998; 393: 524-5.
  38. Wysoczynski M., Reca R., Ratajczak J. et al. Incorporation of CXCR4 into membrane lipid rafts primes homing-related responses of hematopoietic stem/progenitor cells to an SDF-1 gradient. Blood 2005; 105: 40-8.
  39. Hecht I., Cahalon L., Hershkoviz R. et al. Heterologous desensitization of T cell functions by CCR5 and CXCR4 ligands: inhibition of cellular signaling, adhesion and chemotaxis. Int. Immunol. 2003; 15: 29-38.
  40. Poznansky M.C., Olszak I.T., Foxall R. et al. Active movement of T cells away from a chemokine. Nat. Med. 2000; 6: 543-8.
  41. Peled A., Petit I., Kollet O. et al. Dependence of human stem cell engraftment and repopulation of NOD/SCID mice on CXCR4. Science 1999; 283: 845-8.
  42. Voermans C., Gerritsen W.R., von dem Borne A.E. et al. Increased migration of cord bloodŒderived CD34+ cells, as compared to bone marrow and mobilized peripheral blood CD34+ cells across uncoated or fibronectin coated filters. Exp. Hematol. 1999; 27: 1806-14.
  43. Plett A., Frankovitz S.M., Wolber F. et al. Treatment of circulating CD34+ cells with SDF-1ó or anti-CXCR4 antibody enchances migration and NOD/SCID repopulating potential. Exp. Hematol. 2002; 30: 1061-9.
  44. Sanz-Rodriguez F., Hidalgo A., Teixido J. Chemokine stromal cellŒderived factor-1á modulates VLA-4 integrin-mediated multiple myeloma cell adhesion to CS-1/fibronectin and VCAM-1. Blood 2001; 97: 346-51.
  45. Hidalgo A., Sanz-Rodriguez F., Rodriguez-Fernandez J.L. et al. Chemokine stromal cellŒderived factor-1á modulates VLA-4 integrindependent adhesion to fibronectin and VCAM-1 on bone marrow hematopoietic progenitor cells. Exp. Hematol. 2001; 29: 345-55.
  46. Lataillade J.J., Clay D., Dupuy C. et al. Chemokine SDF-1 enhances circulating CD34+ cell proliferation in synergy with cytokines: possible role in progenitor survival. Blood 2000; 95: 756-68.
  47. Vila-Coro A.J.., Rodriguez-Frade J.M., De Ana A.M. et al. The chemokine SDF-1á triggers CXCR4 receptor dimerization and activates the JAK/STAT pathway. FASEB J. 1999; 13: 1699-710.
  48. Cheng Z.J., Zhao J., Sun Y. et al. Beta-arrestin differentially regulates the chemokine receptor CXCR4-mediated signaling and receptor internalization, and this implicates multiple interaction sites between beta-arrestin and CXCR4. J. Biol. Chem. 2000; 275: 2479-85.
  49. Kucia M., Reca R., Miekus K., Wanzeck J. Trafficking of Normal Stem Cells and Metastasis of Cancer Stem Cells Involve Similar Mechanisms: Pivotal Role of the SDF-1 ΠCXCR4 Axis. Stem Cells 2005; 23: 879-94.
  50. Ding Z., Issekutz T.B., Downey G.P. et al. L-selectin stimulation enhances functional expression of surface CXCR4 in lymphocytes: implications for cellular activation during adhesion and migration. Blood 2003; 101: 4245-52.
  51. Kijowski J., Baj-Krzyworzeka M., Majka M. et al. The SDF-1-CXCR4 axis stimulates VEGF secretion and activates integrins but does not affect proliferation and survival in lymphohematopoietic cells. Stem Cells 2001; 19: 453-66.
  52. Ganju R.K., Brubaker S.A., Meyer J. et al. The á-chemokine stromal cellderived factor-1á binds to the transmembrane G-protein-coupled CXCR-4 receptor and activates multiple signal transduction pathways. J. Biol. Chem. 1998; 273: 23169-75.
  53. Zhang X.F., Wang J.F., Matczak E. et al. Janus kinase 2 is involved in stromal cell-derived factor-1 alpha-induced tyrosine phosphorylation of focal adhesion proteins and migration of hematopoietic progenitor cells. Blood 2001; 97: 3342-8.
  54. Tilton B., Ho L., Oberlin E. et al. Signal transduction by CXC chemokine receptor 4. Stromal cell-derived factor 1 stimulates prolonged protein kinase B and extracellular signal-regulated kinase 2 activation in T lymphocytes. J. Exp. Med. 2000; 192: 313-24.
  55. Wang J.F., Park I.W., Groopman J.E. Stromal cell-derived factor-1alpha stimulates tyrosine phosphorylation of multiple focal adhesion proteins and induces migration of hematopoietic progenitor cells: roles of phosphoinositide-3 kinase and protein kinase C. Blood 2000; 95: 2505-13.
  56. Libura J., Drukala J., Majka M. et al. CXCR4-SDF-1 signaling is active in rhabdomyosarcoma cells and regulates locomotion, chemotaxis, and adhesion. Blood 2002; 100: 2597-606.
  57. Majka M., Ratajczak J., Kowalska M.A. et al. Binding of stromal derived factor-1alpha (SDF-1alpha) to CXCR4 chemokine receptor in normal human megakaryoblasts but not in platelets induces phosphorylation of mitogenactivated protein kinase p42/44 (MAPK), ELK-1 transcription factor and serine/threonine kinase AKT. Eur. J. Haematol. 2000; 64: 164-72.
  58. Kremer K.N., Humphreys T.D., Kumar A. et al. Distinct Role of ZAP-70 and Src Homology 2 Domain-Containing Leukocyte Protein of 76 kDa in the Prolonged Activation of Extracellular Signal-Regulated Protein Kinase by the Stromal Cell-Derived Factor-1alpha/CXCL12 Chemokine. J. Immunol. 2003; 171: 360-7.
  59. Bonig H., Pristley V.P., Papayannopoulou T. Hierarhy of molecular pathway usage in bone marrow homing and it™s shift by cytokines. Article in press.
  60. Peled A, Kollet O, Ponomaryov T et al. The chemokine SDF-1 activates the integrins LFA-1, VLA-4, and VLA-5 on immature human CD34+ cells: role in transendothelial/stromal migration and engrafment of NOD/SCID mice. Blood 2000; 95: 3289-96.
  61. Reca R., Mastellos D., Majka M. et al. Functional receptor for C3a anaphylatoxin is expressed by normal hematopoietic stem/progenitor cells, and C3a enhances their homing-related responses to SDF-1. Blood 2003; 101: 3784-93.
  62. Northwest Biotherapeutics www.nwbio.com
  63. AnorMED Inc. http://www.anormed.com

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Роль оси SOF-1-CXCR-4 в миграции и циркуляции стволовых клеток, и при метастазировании опухолевых клеток. По [49] с изменениями

Скачать (106KB)
3. Рис. 2. Модуляция оси SDF-1-CXCR4 внешними факторами. По [49] с изменениями

Скачать (72KB)
4. Рис. 3. Пути передачи сигнала, активируемые осью SDF-1-CXCR4. По [49] с изменениями

Скачать (75KB)

© Эко-Вектор, 2006



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: 

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах