Низкое качество ооцитов как причина фрагментации эмбрионов в программе экстракорпорального оплодотворения: клинический случай
- Авторы: Маясина Е.Н1, Салимов Д.Ф1, Лисовская Т.В1,2
-
Учреждения:
- ООО «Клинический институт репродуктивной медицины»
- Уральский НИИ охраны материнства и младенчества
- Выпуск: Том 15, № 2 (2020)
- Страницы: 101-103
- Раздел: Статьи
- Статья получена: 16.01.2023
- Статья опубликована: 15.06.2020
- URL: https://genescells.ru/2313-1829/article/view/122075
- DOI: https://doi.org/10.23868/202004024
- ID: 122075
Цитировать
Полный текст
Открытый доступ
Доступ предоставлен
Доступ платный или только для подписчиков
Аннотация
Высокая степень фрагментации эмбрионов коррелирует с отсутствием имплантации в программах экстракорпорального оплодотворения. Цель работы: на примере конкретной клинической ситуации с учетом литературных данных определить наиболее вероятную причину фрагментации эмбрионов и неэффективной программы экстракорпорального оплодотворения у пациентки с сохраненным овариальным резервом. В отличие от распространенной формы бесплодия, связанной с отсутствием овуляции и составляющей 35-40% в структуре факторов бесплодия, данная клиническая ситуация представляется неординарной в связи с тем, что беременность в результате повторных программ экстракорпорального оплодотворения не наступала из-за получения фрагментированных эмбрионов при сохранном овариальном резерве и исключении других факторов бесплодия. Успешное решение репродуктивных проблем у данной пары, очевидно, связано с применением программы донации ооцитов.
Полный текст
Об авторах
Е. Н Маясина
ООО «Клинический институт репродуктивной медицины»
Email: tv.lis@mail.ru
Екатеринбург, Россия
Д. Ф Салимов
ООО «Клинический институт репродуктивной медицины»
Email: tv.lis@mail.ru
Екатеринбург, Россия
Т. В Лисовская
ООО «Клинический институт репродуктивной медицины»; Уральский НИИ охраны материнства и младенчества
Email: tv.lis@mail.ru
Екатеринбург, Россия
Список литературы
- Johansson M., Hardarson T., Kersti L. There Is a Cutoff Limit in Diameter Between a Blastomere and a Small Anucleate Fragment. J. Assist. Reprod. Genet. 2003; 20(8): 309-13.
- Prados F.J., Debrock S., Lemmen J.G. et al. The cleavage stage embryo. Hum. Reprod. 2012; 27 Suppl 1: 50-71.
- Van Blerkom J., Davis P., Alexander S. A microscopic and biochemical study of fragmentation phenotypes in stage-appropriate human embryos. Hum. Reprod. 2001; 16(4): 719-29.
- Ebner T., Yaman C., Moser M. et al. Embryo fragmentation in vitro and its impact on treatment and pregnancy outcome. Fertil. Steril. 2001; 76: 281-5.
- Stigliani S., Anserini P., Venturini P.L. et al. Mitochondrial DNA content in embryo culture medium is significantly associated with human embryo fragmentation. Hum. Reprod. 2013; 28(10): 2652-60.
- Kalthur G., Salian S.R., Nair R. et al. Distribution pattern of cytoplasmic organelles, spindle integrity, oxidative stress, octamer-binding transcription factor expression and developmental potential of oocytes following multiple superovulation. Reprod. Fertil. Dev. 2016; 28(12): 2027-38.
- Bedaiwy M.A., Falcone T., Mohamed M.S. et al. Differential growth of human embryos in vitro: role of reactive oxygen species. Fertil. Steril. 2004; 82(3): 593-600.
- Sifer C., Pont J.C., Porcher R. et al. A prospective randomized study to compare four different mineral oils used to culture human embryos in IVF/ ICSI treatments. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2009; 147(1): 52-6.
- Takase K., Ishikawa M., Hoshiai H. Apoptosis in the degeneration process of unfertilized mouse ova. Tohoku J. Exp. Med. 1995; 175: 69-76.
- Gordo A.C., Rodrigues P., Kurokawa M.et al. Intracellular calcium oscillations signal apoptosis rather than activation in in vitro aged mouse eggs. Biol. Reprod. 2002; 66: 1828-37.
- Stensen M.H., Tanbo T.G., Storeng R.et al. Fragmentation of human cleavage-stage embryos is related to the progression through meiotic and mitotic cell cycles. Fertil. Steril. 2015; 103(2): 374-81.
- Chavez S.L., Loewke K.E., Han J.et al. Dynamic blastomerebehaviour reflects human embryo ploidy by the four-cell stage. Nat. Commun. 2012; 3: 1251.
- Daughtry B.L., Rosenkrantz J.L., Lazar N.H. et al. Single-cell sequencing of primate preimplantation embryos reveals chromosome elimination via cellular fragmentation and blastomere exclusion. Genome Res. 2019; 29(3): 367-82.
- Баисова Б.И. Гинекология (учебник). 4е изд., перераб. и доп. М.: Гэотар-Медиа; 2011.
- World Health Organization (WHO). Laboratory Manual for the Examination and Processing of Human Semen. Geneva: World Health Organization Edition; 2010.
- Delhanty J.D., SenGupta S.B., Ghevaria H.J. How common is germinal mosaicism that leads to premeiotic aneuploidy in the female? Assist. Reprod. Genet. 2019; 36(12): 2403-18.
- О порядке использования вспомогательных репродуктивных технологий, противопоказаниях и ограничениях к их применению: Приказ Министерства здравоохранения РФ от 30 августа 2012г. № 107н (ред. от 01.02.2018). [Электронный ресурс]. URL: http://www.garant.ru/products/ipo/prime/doc/70218364/
- ESHRE Special Interest Group Embryology. Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an expert meeting. ALPHA Scientists In Reproductive Medicine. Reprod. Biomed. Online 2011; 22(6): 632-46.
- Gardner D.K., Schoolcraft W.B. Inner cell mass morphology. In: Jansen R., Mortimer D., editors. In vitro culture of human blastocysts. UK: Parthenon Publishing London; 1999. р. 378-88.
Дополнительные файлы
