Гистотопография тучных клеток кожи при моделировании ожога в условиях применения различных методов регионарного воздействия



Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Вопросы регенерации тканей кожи при термической травме являются актуальной проблемой современной биомедицины. Качество и скорость восстановления поврежденного эпидермиса во многом обеспечивает качество жизни пациентов. Выбор оптимального метода лечения ран зависит, в том числе, от знания структурно-функциональных особенностей внеклеточного матрикса соединительной ткани дермы, включая амфорный и волокнистый компоненты. Материал и методы. В исследовании на взрослых крысах Wistar моделировались ожоги II степени на дорзальной поверхности туловища; площадь составила 10% поверхности тела. Проводили гистологическую и иммуногистохимическую оценку вовлечения в раневой процесс тучных клеток и их значение в реализации фибриллогенеза коллагена при реализации различных протоколов лечения ожоговых ран. Проводился планиметрический анализ, позволяющий получить количественные данные о содержании тучных клеток на мм2 кожи, определялась их гистотопография и морфофункциональное типирование для оценки секреторной активности. Результаты. В результате исследования установлено, что ожоговая рана вызывала возрастание численности популяции тучных клеток кожи с определенными гистотопографическими закономерностями, в частности, преимущественной аккумуляцией в периферической области зоны альтерации. Возрастание секреторной активности тучных клеток приводило к реконструкции внеклеточного матрикса, вероятно, стимулируя процессы заживления за счет активизации формирования волокнистого компонента соединительной ткани. При использовании воды с повышенным содержанием молекулярного водорода выявлено существенное увеличение экспрессии триптазы в популяции тучных клеток. Заключение. Выявленные особенности различных протоколов ведения ран в эффективности регенераторных процессов обусловлены степенью вовлечения тучных клеток в фибриллогенез с помощью прямых и опосредованных путей. Таким образом, молекулярные механизмы ремоделирования внеклеточного матрикса, индуцируемые секреторной активностью тучных клеток, представляют собой перспективные мишени для интенсификации регенераторных эффектов фармакологических агентов.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

М. Ю Соболева

Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко

Email: soboleva.doc1@yandex.ru

Д. Б Никитюк

Федеральный исследовательский центр питания, биотехнологии и безопасности пищи; Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)

Н. Т Алексеева

Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко

С. В Клочкова

Российский университет дружбы народов; Московский научно-практический центр медицинской реабилитации, восстановительной и спортивной медицины

Д. А Атякшин

Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко

О. А Гзрасимова

Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко

Д. А Соколов

Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко

А. Г Кварацхелия

Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко

Список литературы

  1. Соболева М.Ю. Морфофункциональные особенности восстановления целостности кожи при термической травме. Клиническая и экспериментальная морфология 2019; 8(1): 71-7.
  2. Botting R.A., Haniffa M. The developing immune network in human prenatal skin. Immunology 2020; 160(2): 149-56.
  3. Соединительная ткань: гистофизиология и биохимия / Н.П. Омельяненко, Л.И. Слуцкий; под ред. С.П. Миронова; Москва: Известия, 2009; 1: 378.
  4. Davison-Kotler E., Marshall W.S., Garcia-Gareta E. Sources of Collagen for Biomaterials in Skin Wound Healing. Bioengineering (Basel) 2019; 6(3): 56.
  5. Plum T., Wang X., Rettel M. et al. Human Mast Cell Proteome Reveals Unique Lineage, Putative Functions, and Structural Basis for Cell Ablation. Immunity 2020; 52(2): 404-16.
  6. Srinivas Akula S., Paivandy A., Fu Z. et al. Quantitative In-Depth Analysis of the Mouse Mast Cell Transcriptome Reveals Organ-Specific Mast Cell Heterogeneity. Cells 2020; 9(1): 211.
  7. Atiakshin D., Buchwalow I., Tiemann M. Mast cells and collagen fibril-logenesis. Histochem Cell Biol. 2020 ; 154(1): 21-40.
  8. Атякшин Д.А., Герасимова О.А., Мешкова В.Ю. и др. Новый гистохимический подход для оценки экспрессии триптазы в популяции тучных клеток. Журнал анатомии и гистопатологии 2020; 9(3): 94-101
  9. Welle M. Development, significance, and heterogeneity of mast cells with particular regard to the mast cell-specific proteases chymase and tryptase. J. Leukoc Biol. 1997; 61(3): 233-45.
  10. Pejler G., Abrink M., Ringvall M., Wernersson S. Mast cell proteases. Adv. Immunol. 2007; 95: 167-255.
  11. Caughey G.H. Mast cell proteases as pharmacological targets. Eur. J. Pharmacol. 2016; 778: 44-55.
  12. Caughey G.H. Mast cell proteases as protective and inflammatory mediators. Adv. Exp. Med. Biol. 2011; 716: 212-34.
  13. Hallgren J., Pejler G. Biology of mast cell tryptase. An inflammatory mediator. Federation of European Biochem. Soc. J. 2006; 273(9): 1871-95.
  14. Caughey G.H. Mast cell tryptases and chymases in inflammation and host defense. Immunol. Rev. 2007; 217: 141-54.
  15. Robida P.A., Puzzovio P.G., Pahima H. et al. Human eosinophils and mast cells: Birds of a feather flock together. Immunol. Rev. 2018; 282(1): 151-67.
  16. de Souza Junior D.A., Santana A.C., da Silva E.Z. et al. The role of mast cell specific chymases and tryptases in tumor angiogenesis. Biomed. Res. Int. 2015; ID 142359.
  17. Yu M., Tsai M., Tam S.Y. et al. Mast cells can promote the development of multiple features of chronic asthma in mice. J. Clin. Invest. 2006; 116: 1633-41.
  18. Ribatti D. Mast cells in lymphomas. Crit. Rev. Oncol. Hematol. 2016; 101: 207-12.
  19. Magnusdottir E.I., Grujic M., Bergman J. et al. Mouse connective tissue mast cell proteases tryptase and carboxypeptidase A3 play protective roles in itch induced by endothelin-1. J. Neuroinflammation 2020; 17(1): 123.
  20. Wang Y., Sha H., Zhou L. et al. The Mast Cell Is an Early Activator of Lipopolysaccharide-Induced Neuroinflammation and Blood-Brain Barrier Dysfunction in the Hippocampus. Mediators Inflamm. 2020; 8098439.
  21. Krystel-Whittemore M., Dileepan K.N., Wood J.G. Mast cell: a multifunctional master cell. Front. Immunol. 2016; 6: 1-12.
  22. Elieh Ali Komi D., Wohrl S., Bielory L. Mast Cell Biology at Molecular Level: a Comprehensive Review. Clin. Rev. Allergy Immunol. 2019; 58(3): 342-65.
  23. Levi-Schaffer F., Piliponsky A.M. Tryptase, a novel link between allergic inflammation and fibrosis. Trends Immunol. 2003; 24: 158-61
  24. Chen L., Gao B., Zhang Y. et al. PAR2 promotes M1 macrophage polarization and inflammation via FOXO1 pathway. J. Cell Biochem. 2019; 120(6): 9799-809.
  25. Xiao H., He M., Xie G. et al. The release of tryptase from mast cells promote tumor cell metastasis via exosomes. BMC Cancer 2019; 19(1): 1015.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2021


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: 

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах