Сравнительный анализ регенераторного потенциала производных крови на клеточной модели повреждения эпителия роговицы



Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Проблема восстановления эпителиального слоя после различных модификаций кератопластики представляет большой фундаментальный интерес. В связи с этим разрабатываются новые способы индукции регенерации, и одним из перспективных подходов в этой области является применение аутологичных производных крови, обладающих высоким регенераторным потенциалом. Цель исследования: сравнить влияние трех производных крови (сыворотки; плазмы, обогащенной тромбоцитами; плазмы, обогащенной факторами роста), применяемых для стимуляции регенераторных процессов на глазной поверхности, на пролиферацию и миграцию клеток роговичного эпителия in vitro. Исследование проводили на клетках эпителия роговицы человека 3 пассажа. Для подтверждения роговичной принадлежности клетки типировали на характерные цитокератины. Динамику миграции оценивали в тесте на заживление раны монослоя, пролиферацию - по результатам формазанового теста. Наибольшее стимулирующее действие на пролиферацию клеток оказывала плазма, обогащенная факторами роста. Значимых различий между группами в скорости заживления раны монослоя зафиксировано не было. Выявлено, что по сравнению с контролем все стимуляторы сдвигают фенотип клеток в сторону эпителиоподобного фенотипа. В результате проведенного исследования было показано, что все три типа апробированных производных крови являются промоутерами реэпителизации роговицы. Использование препаратов, полученных из крови, может положительно влиять на процессы эпителизации при персистирующих эпителиальных дефектах роговицы, что требует дальнейшего изучения.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. М Суббот

Научно-исследовательский институт глазных болезней

С. В Труфанов

Научно-исследовательский институт глазных болезней

Н. П Шахбазян

Научно-исследовательский институт глазных болезней

Email: nare_shakhbazyan@mail.ru

Список литературы

  1. Shimazaki J., Saito H., Yang H.Y. et al. Persistent epithelial defect following penetrating keratoplasty: an adverse effect of diclofenac eyedrops. Cornea 1995; 14(6): 623-7.
  2. Mc Culley J.P., Horowitz B., Husseini Z.M. et al. Topical fibronectin therapy of persistent corneal epithelial defects. Fibronectin Study Group. Transactions of the American Ophthalmological Society 1993; 91: 367-90.
  3. Erdem E., Yagmur M., Harbiyeli I. et al. Umbilical cord blood serum therapy for the management of persistent corneal epithelial defects. International journal of ophthalmology 2014; 7(5): 807-10.
  4. Fu Y., Liu J., Tseng S.C. Ocular surface deficits contributing to persistent epithelial defect after penetrating keratoplasty. Cornea 2012; 31(7): 723-9.
  5. Vaidyanathan U., Hopping G.C., Liu H.Y. et al. Persistent Corneal Epithelial Defects: A Review Article. Med. Hypothesis Discov. Innov. Ophthalmol. 2019; 8(3): 163-76.
  6. Ljubimov A.V., Saghizadeh M. Progress in corneal wound healing. Prog. Retin. Eye Res. 2015; 49: 17-45.
  7. Stramer B.M., Zieske J.D., Jung J.C. et al. Molecular mechanisms controlling the fibrotic repair phenotype in cornea: Implications for surgical outcomes. Investig. Ophthalmol. Vis. Sci. 2003; 44: 4237-46.
  8. Khodadoust A.A., Silverstein A.M., Kenyon D.R. et al. Adhesion of regenerating corneal epithelium. The role of basement membrane. Am.J. Ophthalmol. 1968; 65(3): 339-48.
  9. Torricelli A.A.M., Singh V., Agrawal V. et al. Transmission electron microscopy analysis of epithelial basement membrane repair in rabbit corneas with haze. Invest. Ophth. Vis. Sci. 2013; 54: 4026-33.
  10. Torricelli A.A.M., Singh V., Santhiago M.R. et al. The corneal epithelial basement membrane: Structure, function and disease. Invest. Ophth. Vis. Sci. 2013; 54: 6390-400.
  11. Singh V., Jaini R., Torricelli A.A. et al. TGFp and PDGF-B signaling blockade inhibits myofibroblast development from both bone marrow-derived and keratocyte-derived precursor cells in vivo. Exp. Eye Res. 2014; 121: 35-40.
  12. Wilson S.E., He Y.G., Weng J. et al. Epithelial injury induces kerato-cyte apoptosis: hypothesized role for the interleukin-1 system in the modulation of corneal tissue organization and wound healing. Exp. Eye Res. 1996; 62(4): 325-7.
  13. Wilson S.E., Medeiros C.S., Santhiago M.R. et al. Pathophysiology of corneal scarring in persistent epithelial defects after PRK and other corneal injuries. J. Refract. Surg. 2018; 34(1): 59-64.
  14. Li D.Q., Lokeshwar B.L., Solomon A. et al. Regulation of MMP-9 production by human corneal epithelial cells. Exp. Eye Res. 2001; 73(4): 449-59.
  15. Sivak J.M., Fini M.E. MMPs in the eye: emerging roles for matrix metalloproteinases in ocular physiology. Prog. Retin. Eye Res. 2002; 21(1): 1-14.
  16. Wilson S.E., Mohan R.R., Ambrosio R.Jr. et al. The corneal wound healing response: cytokine-mediated interaction of the epithelium, stroma, and inflammatory cells. Prog. Retin. Eye Res. 2001; 20(5): 625-37.
  17. Girard M.T., Matsubara M., Fini M.E. et al. Transforming growth factor-beta and interleukin-1 modulate metalloproteinase expression by corneal stromal cells. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1991; 32(9): 2441-54.
  18. Etulain J. Platelets in wound healing and regenerative medicine. Platelets 2018; 29(6): 556-68.
  19. Lopez-Plandolit S., Morales M.C., Freire V. et al. Plasma rich in growth factors as a therapeutic agent for persistent corneal epithelial defects. Cornea 2010; 29(8): 843-8.
  20. Abu-Ameerh M.A., Jafar H.D., Hasan M.H. et al. Platelet lysate promotes re-epithelialization of persistent epithelial defects a pilot study. International ophthalmology 2018; 39(10): 1-8.
  21. Tsubota K., Goto E., Shimmura S. et al. Treatment of persistent corneal epithelial defect by autologous serum application. Ophthalmology 1999; 106: 1984-9.
  22. Liu L., Hartwig D., Harloff S. et al. An optimized protocol for the production of autologous serum eye drops. Graefe’s Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 2005; 243(7): 706-14.
  23. Dhurat R., Sukesh M. Principles and Methods of Preparation of Platelet-Rich Plasma: A Review and Author’s Perspective. J. Cutan. Aesthet. Surg. 2014; 7(4): 189-97.
  24. Freire V., Andollo N., Etxebarria J. et al. In vitro effects of three blood derivatives on human corneal epithelial cells. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2012; 53(9): 5571-8.
  25. Giusti I., D’Ascenzo S., Macchiarelli G. et al. In vitro evidence supporting applications of platelet derivatives in regenerative medicine. Blood Transfus. 2020; 18(2): 117-29.
  26. Рогульская Е.Ю., Ревенко Е.Б., Петренко Ю.А. и др. Пролифе-ративно-дифференцировочный потенциал мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток жировой ткани при культивировании в присутствии тромбоцитарного лизата. Гены & Клетки 2014; 9(2): 63-7.
  27. Сергеева Н.С., Шанский Я.Д., Свиридова И.К. и др. Биологические эффекты тромбоцитарного лизата при добавлении в среду культивирования клеток человека. Гены & Клетки 2014; 9(1): 77-85.
  28. Harkin D.G., Barnard Z., Gillies P. et al. Analysis of p63 and cytokeratin expression in a cultivated limbal autograft used in the treatment of limbal stem cell deficiency. Br.J. Ophthalmol. 2004; 88(9): 1154-8.
  29. Kim K.M., Shin Y.T., Kim H.K. Effect of autologous platelet-rich plasma on persistent corneal epithelial defect after infectious keratitis. Japanese journal of ophthalmology 2012; 56(6): 544-50.
  30. Lopez-Plandolit S., Morales M.C., Freire V. et al. Plasma rich in growth factors as a therapeutic agent for persistent corneal epithelial defects. Cornea 2010; 29(8): 843-8.
  31. Abu-Ameerh M.A., Jafar H.D., Hasan M.H. et al. Platelet lysate promotes re-epithelialization of persistent epithelial defects a pilot study. International ophthalmology 2019; 39(7): 1483-90.
  32. Huang C.J., Sun Y.C., Christopher K. et al. Comparison of corneal epitheliotrophic capacities among human platelet lysates and other blood derivatives. PloS One 2017; 12(2): 1-16.
  33. Боровкова Н.В., Филатова И.А., Ченцова Е.В. и др. Эффективность применения лизата богатой тромбоцитами плазмы (БоТП) у пациентов с эрозией роговицы или посттравматическим рубцеванием тканей век. Российский офтальмологический журнал 2020; 13(3): 8-14.
  34. Лошкарева А.О., Майчук Д.Ю. Применение богатой тромбоцитами плазмы у пациентов с хроническими эрозиями роговицы. Современные технологии в офтальмологии 2016; 4: 131-2.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2021


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: 

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах