Нейрональная дифференцировка и применение клеток ПК в неврологии

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

The review is devoted to the search for new [non-hematopoietic] stem and progenitor cell populations of human umbilical cord blood, the possibilities of their isolation and therapeutic use. For convenience, the review is divided into several chapters, at the end of each of which there is a separate list of references.

Full Text

По лечебному потенциалу клеток ПК в экспериментальной неврологии к настоящему времени уже написаны обзоры [19, 20]. Подоплёкой к исследованиям по терапевтической эффективности трансплантации клеток ПК в неврологии послужили работы по выделению и характеристике нейрональных клеток из «стволовых популяций» ПК.

Из различных популяций клеток ПК in vitro несколькими группами исследователей были получены все виды нервных клеток. Пионерские работы по получению нейрональных клеток из ПК были выполнены группами Sanchez-Ramos и Buzanska [1-3]. Пластик-адгезивные клетки и 0034 /0045 клетки были размножены и подвергнуты дифференцировке под влияниям ретиноевой кислоты [RA] и других факторов роста [EGF, BDNF] [1-4]. Причём ретиноевая кислота выступает в данном случае основным нейроиндуктором [1]. Другие группы исследователей подвергали дифференцировке 0045 [5], CD133+ [6] и мезенхимальные клетки ПК [7, 8].

Исходя из результатов этих исследований, было констатировано, что различные популяции стволовых и прогениторных клеток ПК могут быть подвергнуты дифференцировке in vitro во все виды нервных клеток. Это было показано не только исследованием их иммунофенотипа, но и данными по экспрессии генов [мРНК] и характерных транскрипционных факторов [1-8]. Однако наблюдается недостаток экспериментов in vivo на различных неврологических моделях, которые могли бы подтвердить функциональную значимость полученных клеток.

□дна из таких работ, демонстрирующая дифференцировку клеток ПК in vivo, была выполнена группой Zigova [9]. Пластик-адгезивную мононуклеарную предифференцированную фракцию ПК пересаживали унилатерально в желудочки головного мозга новорожденых крысят без иммуносупрессии. Через месяц после трансплантации было выявлено, что около 20% выживших клеток оказывались в субвентрикулярной зоне и только 2% из них экспрессировали GFAP[маркёр микроглии]. Миграции клеток, характерной для нейрональных стволовых, не наблюдали. Возможной причиной низкой выживаемости, отсутствия миграции и дифференцировки в нейроны, является трансплантация весьма гетерогенной популяции клеток в иммунокомпетентный мозг крысы [9].

Таким образом, результаты экспериментов in vitro пока не подтверждены данными in vivo. Вопрос об истинной дифференцировке, отсутствии артефактов [12] и ложноположительных результатах остаётся открытым. Самый часто применяемый индуктор - ретиноевая кислота, возможно, не обладает «достаточной нейроспецифичностью» и вместе с другими индукторами может вызывать плеойтропные эффекты на повышение уровня экспрессии генов других поверхностных маркёров в культуре. Так известно, что как гемопоэтические клетки, так и мезенхимальные стромальные клетки костного мозга спонтанно экспрессируют нейрональные маркёры [10, 11]. Различные добавки в виде факторов роста в культуру могут лишь усиливать экспрессию этих генов, не вызывая прямой дифференцировки в функциональнополноценный нейрон.

Результаты экспериментов по нейрональной дифференцировке клеток ПК изложены в таблице 1.

Терапевтические эффекты, вызываемые трансплантацией клеток ПК, были изучены на нескольких моделях неврологического дефицита. В одной из ранних работ было показано, что внутривенная трансплантация гемопоэтических CD34+ клеток [77-95% в трансплантате] ПК крысам с моделью ишемического инсульта приводит к значимому функциональному восстановлению неврологического дефицита. Клетки мигрировали в головной мозг, преимущественно - в зону поражения, и дифференцировались в нейроны и клетки глии [GFAP+, NeuN+, МАР-2+] [13]. В исследовании, опубликованном в Journal Clinical Investigation, также была показана эффективность трансплантации CD34+ клеток, выделенных из ПК для лечения ишемического инсульта у иммунодефицитных мышей [14]. Группа Willing сравнила внутривенный и интрастриальный способы трансплантации клеток ПК [на фоне иммуносупрессии] крысам с моделью ишемического инсульта [15]. По результатам некоторых функциональныхтестов исследователи заключили, что внутривенное введение клеток может быть даже терапевтически выгоднее интрастриального [15]. При изучении эффектов трансплантации мононуклеарных человеческих клеток ПК на модели ишемического инсульта у крыс наблюдали дозозависимый эффект достоверного улучшения поведенческих реакций и двигательной активности животных через 2 и 4 недели после трансплантации. Оказалось, что максимально эффективно введение клеток ПК в дозе 1 и 10 миллионов. Введённые клетки обнаруживали в головном мозге в периинсультной зоне эпсилатеральной стороны. Клеточная трансплантация значимо «уменьшала» область повреждения [16].

Интересное исследование, выполненное Borlongan [17], показывает, что клетки ПК не мигрируют через гематоэнцефалический барьер [ГЭБ], а только стимулируют эндогенный нейро- и ангиогенез. В подтверждение этого было выявлено повышение концентрации GDNF [glial cell line-derived neurotrophic factor] на 68% в головном мозге инсультных животных после введения клеток и маннитола [повышающего проницаемость ГЭБ]. Концентрация 3 нейротрофических факторов [GDNF, NGF, BDNF] повышалась и в периферической крови приблизительно на 15% в группе животных, получавших клеточную трансплантацию с маннитолом. В остальных группах уровень этих факторов был недетектабелен [17].

 

Таблица 1. Характеристика основных экспериментов по нейрональной дифференцировке клеток ПК

Ссылка

Тип клетки ПК до индукции дифференцировки

Индукторы дифференцировки

Тип клеток после индукции дифференцировки

Sanchez-Ramos J.R., et al.

Exp Neurol 2001; 171: 109-115

Мононуклеарные, пластик-адгезивные

RA+ NGF

Musashi-1+;

P-tubulin lll+/NeuN+;

GFAP+

Buzanska L., et al.

J. Neurochem 2001; 78

(Suppl. 1): 58

CD34-/CD45-

пластик-адгезивные, несколько пассажей, Nestin+

RA (4 дня), BDNF, кокультура с нейрональными клетками эмбриона крысы 4-8 дней

III β-tubulin+ ;

GFAP+/MAP2+;

PLP+/DM-20+;

GalC+

Bicknese A.R., et al.

Cell Transplant 2002; 11; 3: 261-264

CD45(-), мононуклеарные

bFGF + EGF, 7 дней

β-tubulin III+;

GFAP+;

GalC+

Jang Y.K., et al.

J. Neurosci Res 2004; 75; 4: 573-584

CD133+

RA

Musashi-1+ ;

P-tubulin-lll+;

NSE+, GFAP+

MAP-2+, MBP+, PLP+;

NF-L, -M, -H

Otx2, Pax6, Wnt1, Olig2, Hashl and NeuroDI

Jeong Ju. Ah., et al. Neuroreport 2004; 15; 11: 1731-1734

Пластик-адгезивные (мезенхимальные) SH2+/CD13+/CD29+/ CD105+/ASMA+

bFGF, DMSO, butylated hydroxyanisole (BHA)...

1-4 дня

Tuj1+, TrkA+, GFAP+, CNPase+, MAP-2+, NeuroD1 +

Zigova T., et al.

Cell Transplant. 2002; 11; 3: 265-274

«Стромальные»

пластик-адгезивные клетки

RA+NGF

TuJ-1+, GFAP+ in vivo

 

Таким образом, лечение экспериментального ишемического инсульта трансплантацией клетками ПК эффективно за счёт стимуляции эндогенного нейро- и ангиогенеза. Неясной остаётся способность миграции клеток в повреждённый головной мозг через ГЭБ. Способно ли радикальное повышение количества [как показано в первом исследовании] вводимых клеток вызвать их миграцию через ГЭБ? Если экстраполировать дозозависимую терапию на человека, то для достижения эффекта понадобится около 20 доз размороженных проб ПК [согласно первому исследованию].

Различные работы продемонстрировали примерно схожие эффекты трансплантации клеток ПК при экспериментальном инсульте, несмотря на разницу в количестве вводимых клеток [1-Ю миллионов или 200 тысяч] и степени очистки трансплантата [мононуклеарные или CD34+ клетки]. Отсюда можно сделать вывод, что терапевтический эффект, по-видимому, обусловлен факторами, выделяемыми мононуклеарными клетками ПК в условиях неврологического дефицита in vivo, вне зависимости от событий прямой дифференцировки или слияния какой-либо конкретной стволовой или прогениторной популяции трансплантата. Схожие результаты [функциональное восстановление и данные по дифференцировке] были получены и при внутривенной трансплантации клеток ПК в модели повреждения головного мозга у крыс [18].

Складывается впечатление, что терапевтическое действие клеток ПК при неврологическом дефиците неспецифично и не обусловлено их нейрональной дифференцировкой. Тем не менее, базируясь на данных экспериментальных исследований, несколько групп в разных странах приступили к клиническим испытаниям такого метода клеточной терапии. Совсем недавно появилось первое сообщение о восстановлении моторной функции [ходьбы] через 17 лет после травмы спинного мозга у парализованной женщины, после трансплантации клеток ПК [21].

×

About the authors

A. V. Bersenev

Thomas Jefferson University

Author for correspondence.
Email: redaktor@celltranspl.ru
United States, Philadelphia

References

  1. Sanchez-Ramos J.R., Song S., Kamath S.G. et al. Expression of neural markers in human umbilical cord blood. Exp. Neurol. 2001; 171:109 -15.
  2. Buzanska L, Machaj E.K., Zablocka B. et al. Human cord blood derived neurons, astrocytes and oligodendrocytes. J. Neurochem. 2001; 78[Suppl. 1): 58.
  3. Buzanska L, Machaj E.K., Zablocka B. et al. Human cord blood-derived cells attain neuronal and glial features in vitro. J. Cell Sol. 2002; 115(Pt. 10): 2131-8.
  4. Machaj E.K., Buzanska L, Gajkowska A. et al. Cord blood derived stem cells differentiates in vitro into neurons, astrocytes and oligodendrocytes. Exp. Hematology 2001; 29[Suppl. 1): 4.
  5. Bicknese A.R., Goodwin H.S., Quinn C.O. et al. Human umbilical cord blood cells can be induced to express markers for neurons and glia. Cell Transplant. 2002; 11(3): 261-4.
  6. Jang Y.K., Park J.J., Lee M.C. et al. Retinoic acid-mediated induction of neurons and glial cells from human umbilical cord-derived hematopoietic stem cells. J. Neurosci. Res. 2004;.75[4): 573-84.
  7. Fu Y.S., Shih Y.T., Cheng Y.C., Min M.Y. Transformation of human umbilical mesenchymal cells into neurons in vitro. J. Biomed. Sol. 2004; 11: 652-60.
  8. Jeong J.A., Gang E.J., Hong S.H. et al. Rapid neural differentiation of human cord blood-derived mesenchymal stem cells. Neuroreport. 2004; 15(111:1731-4.
  9. Zigova T„ Song S., Willing A.E. et al. Human umbilical cord blood cells express neural antigens after transplantation into the developing rat brain. Cell Transplant. 2002; 11(3): 265-74.
  10. Goolsby J., Marty M.C., Heletz D. et al. Hematopoietic progenitors express neural genes. Proc. Nat. Acad. Sci. USA 2003; 100(25): 14926-31.
  11. Tondreau T., Lagneaux L., Dejeneffe M. et al. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells already express specific neural proteins before any differentiation. Differentiation 2004; 72(7): 319-26.
  12. Lu P., Blesch A., Tuszynski М.Н. Induction of bone marrow stromal cells to neurons: Differentiation, transdifferentiation, or artifact? J. Neurosci. Res. 2004;77:174-91.
  13. Chen J., Sanberg P.R., Li Y. et al. Intravenous administration of human umbilical cord blood reduces behavioral deficits after stroke in rats. Stroke 2001; 32: 2682.
  14. Taguchi A., SomaT.,Tanaka H. etal. Administration of CD34+ cells after stroke enhances neurogenesis via angiogenesisin a mouse model. J. Clin. Invest. 2004;114:330-8.
  15. Willing A.E., Lixian J., Milliken M. et al. Intravenous versus intrastriatal cord blood administration in a rodent model of stroke. J. Neurosci. Res. 2003; 73(3): 296-307.
  16. Vendrame M„ Cassady J., Newcomb J. et al. Infusion of human umbilical cord blood cells in a rat model of stroke dose-dependently rescues behavioral deficits and reduces infarct volume. Stroke 2004; 35: 2390.
  17. Borlongan C.V., Hadman M„ Sanberg C.D., Sanberg P.R. Central nervous system entry of peripherally injected umbilical cord blood cells is not required for neuroprotection in stroke. Stroke 2004; 35: 2385.
  18. Lu D„ Sanberg P.R., Mahmood A. et al. Intravenous administration of human umbilical cord blood reduces neurological deficit in the rataftertraumatic brain injury. Cell Transplant. 2002; 11(3): 275-81.
  19. Newman M.B., Davis C.D., Borlongan C.V. et al. Transplantation of human umbilical cord blood cells in the repair of CNS diseases. Expert. Opin. Biol. Ther. 2004; 4(2): 121-30.
  20. Peterson D.A. Umbilical cord blood cells and brain stroke injury: bringing in fresh blood to address an old problem. J. Clin. Invest. 2004; 114(3): 312-4.
  21. Kang К.-S., Kim S.W., Oh Y.H. et al. A 37-year-old spinal cord-injured female patient, transplanted of multipotent stem cells from human UC blood, with improved sensory perception and mobility, both functionally and morphologically: a case study. Cytotherapy 2005; 7: 368-73.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2023 Eco-Vector



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: