Osobennosti formirovaniya kostnoy mozoli u krys posle vvedeniya v oblast' pereloma mul'tipotentnykh mezenkhimal'nykh stromal'nykh kletok, kul'tivirovannykh pri razlichnom soderzhanii kisloroda

Abstract

Исследовано влияние введения костномозговых мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток (ММСЮ на формирование костной мозоли после экспериментального перелома малоберцовой кости у крыс. Протестированы клеточные препараты ММСК, предкультивированных в условиях нормок-сии [20% 02, 5% С02, 75% N^ и пониженного содержания кислорода (5%02, 5% С02, 90% NJ. Работа выполнена на 32 крысах-самцах линии Вистар, которые были разделены на 4 группы по 8 животных в каждой в зависимости от воздействия после перелома: 1 - контроль, без каких-либо дополнительных воздействий, 2 - введение в зону повреждения культуральной среды без факторов роста, 3 - введение суспензии [0,25 мл, 5х 105 ММСЮ клеток, культивированных в стандартных условиях, 4 - введение такого же количества ММСК, культивированных при пониженном содержании кислорода. Гистоморфо-метрический анализ костной мозоли на 14 сут. после операции продемонстрировал достоверное увеличение коэффициента утолщения в 1,2-1,3 раза у животных, которым вводили клеточные препараты, по сравнению с контролем. При этом объём костной мозоли у крыс экспериментальных групп был также в 1,3-1,4 раза больше [p<0,05J. Это происходило, главным образом, за счёт увеличения объёма хряща, более выраженного при введении ММСК, культивировавшихся в условиях пониженного содержания кислорода. Таким образом, введение ММСК способствовало увеличению объёма новообразованных тканей на раннем этапе формирования костной мозоли при экспериментальном переломе трубчатой кости у крыс.

References

  1. Trounson A. The production and directed differentiation of human embryonic stem cells. Endocr. Rev. 2006; 27: 208-19.
  2. Никольский H.H., Габай И.А., Сомова H.B. Эмбриональные стволовые клетки человека. Проблемы и перспективы. Цитология 2007; 49: 529-38.
  3. De Kok I.J., Hicok К.С, Padilla R.J. et al. Effect of vitamin D pretreatment of human mesenchymal stem cells on ectopic bone formation. J. Oral Implantol. 2006; 32: 103-9.
  4. PittengerM.F., Mackay A.M., Beck S.С et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science 1999; 284: 143-7.
  5. Annabi В., Lee Y.T., Turcotte S. et al. Hypoxia promotes murine bone-marrow-derived stromal cell migration and tube formation. Stem Cells. 2003; 21: 337-47.
  6. Ruas J.L., Lendahl U., Poellinger L. Modulation of vascular gene expression by hypoxia.Curr. Opin. Lipidol. 2007; 18: 508-14.
  7. Lasky J.L., Wu H. Notch signaling, brain development, and human disease. Pediatr. Res. 2005; 57: 104R-109R.
  8. Zhu L.L., Wu L.Y., Yew D.T., Fan M. Effects of hypoxia on the proliferation and differentiation of NSCs. Mol. Neurobiol. 2005; 31: 231-42.
  9. Panchision D.M. The role of oxygen in regulating neural stem cells in development and disease. J. Cell. Physiol. 2009; 220: 562-8.
  10. Fraker C.A., Ricordi C, Inverardi L, DomHnguez-Bendala J. Oxygen: a master regulator of pancreatic development? Biol. Cell. 2009; 101: 431-40.
  11. Kanichai M., Ferguson D., Prendergast P.J., Campbell V.A. Hypoxia promotes chondrogenesis in rat mesenchymal stem cells: a role for АКТ and hypozia-inducible factor CHIF1-1 alpha. J. Cell. Physiol. 2008; 216: 708-15.
  12. Khan W.S., Adesida А.В., Hardingham Т.Е. Hypoxic conditions increase hypoxia-inducible transcription factor 2alpha and enhance chondrogenesis in stem cells from the infrapatellar fat pad of osteoarthritis patients. Arthritis Res. Ther. 2007; 9: R55.

Copyright (c) 2009 PJSC Human Stem Cells Institute



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС 77 - 57156 от 11.03.2014.

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies