Adipotsity kostnogo mozga yavlyayutsya ingibitorami gemopoeticheskogo mikrookruzheniya
- Authors: Rizvanov A1
-
Affiliations:
- Issue: Vol 4, No 3 (2009)
- Pages: 31-32
- Section: Articles
- URL: https://genescells.ru/2313-1829/article/view/121405
- DOI: https://doi.org/10.23868/gc121405
- ID: 121405
Cite item
Open Access
Access granted
Subscription or Fee Access
Abstract
Кроветворные (гемопоэтические] стволовые клетки [ГСЮ являются мультипотентными стволовыми клетками, способными к самообновлению и дифференцировке во все типы клеток крови. ГСК находятся главным образом в костном мозге взрослого человека. Различают два типа костного мозга: красный костный мозг, состоящий из стромы и ГСК/клеток-предшественниц, и желтый костный мозг, в котором преобладает жировая ткань. При рождении преобладает красный костный мозг, но с возрастом происходит его замещение на желтый. Ранее считалось, что подобное замещение красного костного мозга является механическим заполнением освобождающегося пространства в костномозговых полостях. Однако в своей работе О. Naveiras с соавт. [лаборатория Джоржа Дейли] показали, что адипоциты играют активную роль в регуляции гемопоэтической активности костного мозга.
Для начала авторы провели исследования по изучению активности ГСК в различных костях мышей. В качестве модели костного мозга с повышенным содержанием адипоцитов были выбраны хвостовые позвонки [на уровне 3-4 позвонков]. Костный мозг грудных позвонков мышей практически не содержит адипоцитов и состоит в основном из красного костного мозга. Исследователи провели выделение ГСК из хвостовых и грудных позвонков 12-недельных мышей с последующим их феноти-пическим и функциональным анализом. При этом было установлено, что костный мозг хвостовых позвонков по сравнению с костным мозгом грудных позвонков содержал только 25% CD45 + клеток. Доля всех классов CD45 + гемопоэтических клеток-предшественниц [муль-типотентных предшественников, общих миелоидных предшественников, мегакариоцитных-эритроидных предшественников) была в 2-3 раза ниже в популяции клеток костного мозга хвостовых позвонков по сравнению с красным костным мозгом грудных позвонков. Клоно-генный анализ также показал более низкое [в 1,5-3 раза] содержание различных классов предшественников в костном мозге хвостовых позвонков мышей. В серии контрольных экспериментов авторы показали, что полученные данные не связаны с возрастом животных или с характером физической нагрузки исследуемых костей. Таким образом, авторами дается заключение, что костный мозг хвостовых позвонков мышей обладает пониженным содержанием ГСК как в абсолютных количествах, так и в процентном отношении.
Для начала авторы провели исследования по изучению активности ГСК в различных костях мышей. В качестве модели костного мозга с повышенным содержанием адипоцитов были выбраны хвостовые позвонки [на уровне 3-4 позвонков]. Костный мозг грудных позвонков мышей практически не содержит адипоцитов и состоит в основном из красного костного мозга. Исследователи провели выделение ГСК из хвостовых и грудных позвонков 12-недельных мышей с последующим их феноти-пическим и функциональным анализом. При этом было установлено, что костный мозг хвостовых позвонков по сравнению с костным мозгом грудных позвонков содержал только 25% CD45 + клеток. Доля всех классов CD45 + гемопоэтических клеток-предшественниц [муль-типотентных предшественников, общих миелоидных предшественников, мегакариоцитных-эритроидных предшественников) была в 2-3 раза ниже в популяции клеток костного мозга хвостовых позвонков по сравнению с красным костным мозгом грудных позвонков. Клоно-генный анализ также показал более низкое [в 1,5-3 раза] содержание различных классов предшественников в костном мозге хвостовых позвонков мышей. В серии контрольных экспериментов авторы показали, что полученные данные не связаны с возрастом животных или с характером физической нагрузки исследуемых костей. Таким образом, авторами дается заключение, что костный мозг хвостовых позвонков мышей обладает пониженным содержанием ГСК как в абсолютных количествах, так и в процентном отношении.
References
- Askmyr М., Sims N., Martin J., Purton L. What is the true nature of the osteoblastic hematopoietic stem cell niche? Trends Endocrinol. Metab., on-line publ. 13 July 2009.
- Moitra J., Mason M., Olive M. et al. Life without white fat: a transgenic mouse. Genes Dev. 1ЭЭ8; 12(20): 3168-81.
- Yang L, Bryder D., Adolfsson J. et al. Identification of LinC-)Sca1 [ + )kit[ + )CD34( + )Flt3- short-term hematopoietic stem cells capable of rapidly reconstituting and rescuing myeloablated transplant recipients. Blood 2005; 105(7): 2717-23.
- Calvi L., Adams G., Weibrecht K. et al. Osteoblastic cells regulate the haematopoietic stem cell niche. Nature 2003; 425(6960): 841-6.
- Zhang J., Niu C, Ye L. et al. Identification of the haematopoietic stem cell niche and control of the niche size. Nature 2003; 425(6960): 836-41.
- Tavassoli M., Maniatis A., Crosby W. Induction of sustained hemopoiesis in fatty marrow. Blood 1974; 43(1): 33-8.
- Botolin S., McCabe L. Inhibition of PPARgamma prevents type I diabetic bone marrow adiposity but not bone loss. J. Cell Physiol. 2006; 209(3): 967-76.
- Furuhashi M., Tuncman G., йдгдьп С. et al. Treatment of diabetes and atherosclerosis by inhibiting fatty-acid-binding protein aP2. Nature 2007; 447(7147): 959-65.
Supplementary files
