<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="research-article" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Genes &amp; Cells</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Genes &amp; Cells</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Гены и Клетки</trans-title></trans-title-group><trans-title-group xml:lang="zh"><trans-title>Genes and Cells</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">2313-1829</issn><issn publication-format="electronic">2500-2562</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Human Stem Cells Institute</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">139206</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>Original Study Articles</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>Оригинальные исследования</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Research Article</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">Isolation and culturing of chondrocytes from different sources</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Выделение и культивирование хондроцитов, полученных из различных источников</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Кym</surname><given-names>I. I.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Ким</surname><given-names>И. И.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><email>redaktor@celltranspl.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib></contrib-group><aff id="aff1"><institution></institution></aff><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2006-12-15" publication-format="electronic"><day>15</day><month>12</month><year>2006</year></pub-date><volume>1</volume><issue>4</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru"/><fpage>48</fpage><lpage>51</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2023-01-26"><day>26</day><month>01</month><year>2023</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2023-01-26"><day>26</day><month>01</month><year>2023</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2006, Eco-Vector</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2006, Эко-Вектор</copyright-statement><copyright-year>2006</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Eco-Vector</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Эко-Вектор</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/></permissions><self-uri xlink:href="https://genescells.ru/2313-1829/article/view/139206">https://genescells.ru/2313-1829/article/view/139206</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>The investigation was aimed to establish conditions for isolation and culturing cells of cartilaginous tissue procured from different sources.</p> <p>Methods of chondrocytes obtaining and cultureing were compared. The chondrocytes were procured from human fetal cartilaginous tissue and the spinal column of patients with idiopathic scoliosis, as well as intervertebral disks of a new-born dog backbone.</p> <p>The investigations of obtaining and culturing of chondrocytes from different sources showed that using collagenase solutions during 12-16 h at 37°С with continuous interfusion allowed to receive cells suspension with more than 90% viability. The maximal amount of viable chondrocytes was derived while segregating cells using 0.15% collagenase. Нuman fetal cartilaginous tissue and that of dog intervertebral disks is being dissociated in collagenase for 5-8 h, tissue from the spinal column of patients with idiopathic scoliosis for 18-20 h.</p> <p>While culturing human fetal chondrocytes had the best proliferating capability. The culture of chondrocytes from the spinal column of idiopathic scoliosis patients had low proliferation index and a short culturing time as compared with fetal culture.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>Целью данного исследования явилась отработка условий получения и культивирования клеток хрящевых тканей, полученных из различных источников.</p> <p>В работе проводили сравнение способов выделения и культивирования хондроцитов, полученных из хрящевой ткани фетусов человека и из позвоночника больных идиопатическим сколиозом, а также из хрящевой ткани межпозвонковых дисков новорожденной собаки. Исследования по подбору условий выделения и культивирования хондроцитов показали, что применение растворов коллагеназы в течение 12-16 часов при температуре 37°С и непрерывном перемешивании позволяет получить суспензию клеток с жизнеспособностью более 90%. Максимальное количество жизнеспособных хондроцитов наблюдали при выделении клеток с помощью 0,15% коллагеназы. Хрящевая фетальная ткань человека и межпозвонковых дисков собаки диссоциируется в коллагеназе 5-8 часов, ткань позвоночника больных идиопатическим сколиозом 18-20 часов. При культивировании наилучшей пролиферативной способностью обладали хондроциты фетуса человека. Культура хондроцитов, полученных из позвоночника больных идиопатическим сколиозом, обладала низким показателем индекса пролиферации и коротким сроком культивирования по сравнению с фетальной культурой.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>chondrocytes</kwd><kwd>cell culture</kwd><kwd>culturing</kwd><kwd>collagenase</kwd><kwd>tripsin</kwd><kwd>hyaluronidase</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>хондроциты</kwd><kwd>культура клеток</kwd><kwd>культивирование</kwd><kwd>коллагеназа</kwd><kwd>трипсин</kwd><kwd>гиалуронидаза</kwd></kwd-group><funding-group/></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Oakes B.W. Orthopaedic tissue engineering: from laboratory to the clinic. Bone and join disorders: prevention and control. The Medical Journal of Australia. Bone and Joint Disorders: Prevention and Control. 2004; 180: 35-8.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>Vacanti J. et al. Tissue engineering in orthopedic surgery. Orthopedic Clinics of North America 2000; 31(3): 351-6.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>Волков А.В. Тканевая инженерия в ортопедии: из лаборатории в клинику (мини-обзор). http://celltranspl.ru/journal/publications/?MESSAGES[1]=SHOW_PUBLICATION&amp;PUBLICATION_ID=596.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Применение клеточных технологий в медицине. Центр Иммунотерапии и Клеточных Технологий. http://www.transplantation.ru/ru/stem-cell-therapy.php.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Гольдберг Е.Д., Дыгай А.М., Шахов В.П. Методы культуры ткани в гематологии. Томск: Изд-во Томского ун-та; 1992.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Фрешни Р. Культура животных клеток. Методы. М.: Мир; 1989: 117-33.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Пинаев Г.П. Методы культивирования клеток: Сборник научных трудов. Л.: Наука; 1988.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Богрянцева М.П., Трошкова Г.П., Мартынец Л.Д. и др. Некоторые аспекты производства и применения трипсина сухого стерильного для культур клеток. Международный конгресс «Биотехнология: состояние и перспективы развития». Москва, 14-18 октября, 2002 г. М.: ЗАО «ПИК «Максима»», РХТУ им. Д.И. Менделеева 2002: 98.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Jakob M., Demarteau O., Schafer D. et al. Enzymatic digestion of adult human articular cartilage yields a small fraction of the total available cells. Connect. Tissue Res. 2003; 44(3-4): 173-80.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>Barbero A., Grogan S., Schafer D. et al. Age related changes in human articular chondrocyte yield, proliferation and post-expansion chondrogenic capacity. OsteoArthritis and Cartilage 2004; 12: 476Œ84.</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>Héraud F., Héraud A., Harmand M.-F. Apoptosis in normal and osteoarthritic human articular cartilage. Ann. Rheum. Dis. 2000; 59: 959-65.</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>Cornelissen M., Verbruggen G., Malfait A.M. et al. The study of representative populations of native aggrecan aggregates synthesized by human chondrocytes in vitro. J. Tiss. Cult. Meth. 1993; 15: 139Œ46.</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>Dharmavaram R.M., Liu G., Mowers S.D., Jimenez S.A. Detection and Characterization of Sp1 Binding Activity in Human Chondrocytes and Its Alterations during Chondrocyte Dedifferentiation. J. boil. chem. 1997; 272(43): 26918-25.</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>Зубов Д.А., Попандопуло А.Г., Слипченко И.О. и др. Морфологические особенности постнатальных хондроцитов человека in vitro. Цитология 2004; 46(10): 917.</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>Зайдман А.М. Идиопатический сколиоз: морфология, биохимия, генетика. Новосибирск: Новосиб. ун-та; 1993.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
