Genes & CellsGenes & CellsГены и КлеткиGenes and Cells2313-18292500-2562Human Stem Cells Institute13372410.23868/202209011Original Study ArticlesОригинальные исследованияResearch ArticleDynamics of inflammatory infiltrate in mice liver under conditions of experimental fecal peritonitisДинамика состава воспалительного инфильтрата в печени мышей при экспериментальном каловом перитонитеSafronovaG. M.СафроноваГ. М.
Russian Federation
f.indeickin@yandex.ruIndeikinF. A.ИндейкинФ. А.
Russian Federation
f.indeickin@yandex.ruAndreevYu. A.АндреевЮ. А.
Russian Federation
f.indeickin@yandex.ruEmelinA. M.ЕмелинА. М.
Russian Federation
f.indeickin@yandex.ruPresnyakovE. V.ПресняковЕ. В.
Russian Federation
f.indeickin@yandex.ruDeevR. V.ДеевР. В.
Russian Federation
f.indeickin@yandex.ruI.I. Mechnikov North-Western State Medical UniversityСеверо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. МечниковаHistograft LLCООО «Гистографт»2509202217264662501202325012023Copyright ©; 2022, Eco-VectorCopyright ©; 2022, Эко-Вектор2022Eco-VectorЭко-Векторhttps://genescells.ru/2313-1829/article/view/133724

The relationship between the liver and the peritoneum is an important element in a body homeostasis maintaining. Morphofunctional changes occurring in the liver in response to fecal peritonitis allow a better understanding of this relationship. Despite the existing researches, some aspects of the pathological changes occurring in the liver in fecal peritonitis require a special study.

Purpose: to describe the composition and dynamics of the lymphocytic-leukocytic infiltrate in the liver in conditions of experimental fecal peritonitis.

The study was conducted on Balb/c (n=5) mice with artificially induced fecal peritonitis. One animal was euthanized on 1, 3, 5, 7 and 14 day of the experiment. Immunophenotyping of inflammatory infiltrate cells was performed on liver tissue samples using antibodies to CD3, CD45, CD163. Morphometric analysis was carried out with the calculation of the number of cells per unit area.

It was shown that the highest intensity of infiltration by CD45+-cells is observed on the 3rd day of the experiment with a subsequent decrease; infiltration by CD3+-cells increases by the 5th day of the experiment without further dynamics; infiltration of CD163+-cells — by day 7 without further changes.

Conclusions: the severity of the liver parenchyma infiltration by immune cells in dynamics reflects the organ reaction to experimental fecal peritonitis.

Взаимоотношения печени и брюшины — важный элемент поддержания гомеостаза организма. Морфофункциональные изменения, происходящие в печени при воспалении брюшины в случае развития калового перитонита, позволяют дополнить известные сведения о его патоморфогенезе.

Цель работы: описать состав и динамику клеточного инфильтрата в тканях печени в условиях экспериментального калового перитонита.

Исследование проведено на мышах породы Balb/c (n=15) с искусственно вызванным каловым перитонитом. По 3 животных выводили из эксперимента через 1, 3, 5, 7, 14 сут. после внутрибрюшинного помещения каловых масс. Образцы фрагментов печени были обработаны по стандартному гистологическому протоколу, окрашены гематоксилином и эозином, выполнено иммунофенотипирование клеток воспалительного инфильтрата с использованием антител к CD45, CD3, CD163. Проведен морфометрический анализ.

Установлено, что наибольшая выраженность инфильтрации CD45+-клетками развивается к 3 сут. эксперимента, в дальнейшем число лейкоцитов в печени снижается; доля CD3+-клеток в инфильтрате максимальна через 5 сут.; инфильтрация CD163+-М2-макрофагами достигает пика к 7 сут.

peritoneumliverfecal peritonitisimmunophenotypingбрюшинапеченькаловый перитонитиммунофенотипированиеЛуцевич О.Э., Акимов В.П., Ширинский В.Г. и др. Вопросы патогенеза спаечной болезни брюшины и современные подходы к ее предупреждению. Московский хирургический журнал 2017; 3: 11–26. [Lutsevich O.E., Akimov V.P., Shirinsky V.G. et al. Some pathogenesis aspects of peritoneal adhesion formation and modern approaches to its prevention. Moscow Surgical J. 2017; 3: 11–26].Буянов В.М., Родоман Г.В., Белоус Г.Г. и др. Экспериментальная модель острого гнойного перитонита. Хирургия 1997; 1: 25–8 [Buyanov V.M., Rodoman G.V., Belous G.G. et al. Experimental model of acute purulent peritonitis. Surgery 1997; 1: 25–8].Федоров Н.А., Матвеев Д.В., Каралкин А.В. и др. Фибронектин крови и фагоцитарная функция печени у больных перитонитом. Вестник хирургии 1995; 154(1): 12–7 [Fedorov N.A., Matveev D.V., Karalkin A.V. et al. Blood fibronectin and phagocytic function of the liver in patients with peritonitis. Bulletin of Surgery 1995; 154(4): 12–7].Gadelha D.N.B., Melo M.C.S.C., Oliveria T.K.B. et al. Autogenous fecal peritonitis in Wistar rats with permanent bilateral carotid occlusion: morbidity, mortality and microbiological response. Acta Cir. Bras. 2013; 28: 299–306.Garrido A.G., Figueiredo L.F.P., Silva M.R. Experimental models of sepsis and septic shock: an overview. Acta Cir. Bras. 2004; 19: 82–8.Brocco M.C., Gomez R.S., Paulo D.N.S et al. Histological features of peritoneal lavage with ropivacaine in rats with fecal peritonitis. Acta Cir. Bras. 2012; 27: 193–9.Brocco M.C., Paulo D.N.S., Baptista J.F.A. et al. Effects of peritoneal lavage with lidocaine on survival of rats with fecal peritonitis. ActaCir. Bras. 2008; 23: 42–7.Ельчанинов А.В. Молекулярные и клеточные механизмы регенерации печени после субтотальной резекции в эксперименте [диссертация]. Москва: ФГБНУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека»; 2017. [Elchaninov A.V. Molecular and cell mechanisms of liver regeneration after subtotal resection in experiment [dissertation]. Moscow: Federal State Scientific Institution (FGBNU NIIMCH); 2017].Lutz P., Jeffery H.C., Jones N. et al. NK Cells in Ascites From Liver Disease Patients Display a Particular Phenotype and Take Part in Antibacterial Immune Response. Front. Immunol. 2019; 10: 1838.