Genes & CellsGenes & CellsГены и КлеткиGenes and Cells2313-18292500-2562Human Stem Cells Institute12073810.23868/201808021ArticlesСтатьиResearch ArticleSoluble factors formed during the healing of the endometrium suppress its "fibrosis” in vitroРастворимые факторы, образуемые при заживлении эндометрия, подавляют его «фиброзирование» in vitroEremichevR. YЕремичевР. ЮGrigorievaO. AГригорьеваО. АKulebyakinK. YКулебякинК. ЮEfimenkoA. YuЕфименкоА. ЮMakarevichP. IМакаревичП. Иpavel.makarevich@gmail.comInstitute of Regenerative Medicine, Medical Research Centre of M.V. Lomonosov Moscow State UniversityИнститут регенеративной медицины, Медицинский научно-образовательный центр Московского государственного университета имени М.В. Ломоносова15062018132VOL 13, NO2 (2018)ТОМ 13, №2 (2018)636605012023Copyright ©; 2018, Eco-VectorCopyright ©; 2018, Эко-Вектор2018Eco-VectorЭко-Векторhttps://genescells.ru/2313-1829/article/view/120738

During each period, the uterine mucosa of women of reproductive age heals without fibrosis. Previously, we established that the soluble factors that are released in this way have an antifibrotic effect on the culture of the human endometrial mesenchymal stromal cells. The objective of this work was to evaluate the antifibrotic properties of these factors on the in vitro endometrial fibrosis model. Serum menstrual and peripheral blood were obtained from a healthy donor in one day. Mesenchymal stromal cells of the endometrium were also isolated from menstrual blood. Simulation of endometrial fibrosis in vitro was carried out by differentiation of endometrial mesenchymal stromal cells into myofibroblasts under the action of TGF-ß1 (5 ng/ml). Evaluation of the effectiveness of the menstrual blood serum antifibrotic effect on the endometrial mesenchymal stromal cells and myofibroblasts derived from them was carried out by analyzing the expression of а-smooth muscle actin by immunofluorescence. Serum of peripheral blood with equal protein concentration was used as a control. Menstrual blood serum reduces the number of stress-fibrils positive for а-smooth muscle actin (a marker of myofibroblasts), both in the culture of endometrial mesenchymal stromal cells, and in in vitro modeling of endometrial fibrosis using TGF-ß1. These results indicate the presence of soluble factors in the serum of menstrual blood with antifibrotic properties. Perhaps their identification will explain the mechanisms of endometrial healing not accompanied by fibrosis. In addition, it can help to identify the causes of fibrosis of the uterine lining in gynecological diseases and develop effective methods for their treatment.

Во время каждой менструации слизистая оболочка матки женщин репродуктивного возраста заживает без фиброзирования. Ранее мы показали, что выделяющиеся при этом растворимые факторы оказывают противофиброзное действие на культуру мезенхимных стромальных клеток эндометрия человека. Задачей данной работы являлась оценка противофиброзных свойств этих факторов на модели фиброза эндометрия in vitro. От здорового донора в один день были получены сыворотки менструальной и периферической крови. Из менструальной крови также были выделены мезенхимные стромальные клетки эндометрия. Моделирование фиброза эндометрия in vitro проводилось путем трансдифференцировки мезенхимальных стромальных клеток эндометрия в миофибробласты под действием TGF-ß1 (5 нг/мл). Оценку эффективности противофиброзного действия сыворотки менструальной крови на мезенхимальные стромальные клетки эндометрия и полученные из них миофибробласты осуществляли путем подсчета нормированной на количество ядер общей площади флуоресцентного сигнала, отраженного на изображениях культуры мезенхимных стромальных клеток эндометрия, полученных при детекции а-гладкомышечного актина методом иммуноцитофлуоресценции. В качестве контроля использовали сыворотку периферической крови с равной концентрацией белка. Мы показали, что сыворотка менструальной крови уменьшает количество стресс-фибрилл, позитивных на а-гладкомышечный актин (маркер миофибробластов), как в культуре мезенхимальных стромальных клеток эндометрия, так и при in vitro моделировании фиброза эндометрия с применением TGF-ß1. Полученные нами результаты свидетельствуют о содержании в сыворотке менструальной крови растворимых факторов, обладающих противофиброзными свойствами. Возможно, их идентификация позволит объяснить механизмы заживления эндометрия, не сопровождаемого фиброзированием, а также выявить причины фиброза слизистой оболочки матки при гинекологических заболеваниях и разработать эффективные методы их лечения.

endometriumfibrosismenstrual bloodendometrial mesenchymal stromal cellsэндометрийфиброзированиеменструальная кровьмезенхимные стромальные клетки эндометрияR., Hart R., Karthigasu K.A. et al. A re-appraisal of the morphological changes within the endometrium during menstruation: A hysteroscopic, histological and scanning electron microscopic study. Hum Reprod. 2009; 24(6): 1393-401.Zhou Q., Wu X., Dai X. et al. The different dosages of estrogen affect endometrial fibrosis and receptivity, but not sdf-1/cxcr4 axis in the treatment of intrauterine adhesions. Gynecol Endocrinol. 2018; 34(1): 49-55.Zhu H.Y., Ge T.X., Pan Y.B. et al. Advanced role of hippo signaling in endometrial fibrosis: Implications for intrauterine adhesion. Chin Med J (Engl). 2017; 130(22): 2732-7.Shen M., Liu X., Zhang H. et al. Transforming growth factor beta1 signaling coincides with epithelial-mesenchymal transition and fibroblast-tomyofibroblast transdifferentiation in the development of adenomyosis in mice. Hum Reprod. 2016; 31(2): 355-69.Ibrahim M.G., Sillem M., Plendl J. et al. Myofibroblasts are evidence of chronic tissue microtrauma at the endometrial-myometrial junctional zone in uteri with adenomyosis. Reprod Sci. 2017; 24(10): 1410-1418.Li J., Du S., Sheng X. et al. Microrna-29b inhibits endometrial fibrosis by regulating the sp1-tgf-beta1/smad-ctgf axis in a rat model. Reprod Sci. 2016; 23(3): 386-94.Li J., Cen B., Chen S. et al. Microrna-29b inhibits tgf-beta1-induced fibrosis via regulation of the tgf-beta1/smad pathway in primary human endometrial stromal cells. Mol Med Rep. 2016; 13(5): 4229-37.Falke L.L., Gholizadeh S., Goldschmeding R. et al. Diverse origins of the myofibroblast-implications for kidney fibrosis. Nat Rev Nephrol. 2015; 11(4): 233-44.Pellicoro A., Ramachandran P., Iredale J.P. et al. Liver fibrosis and repair: Immune regulation of wound healing in a solid organ. Nat Rev Immunol. 2014; 14(3): 181-94.Kong P., Christia P.,Frangogiannis N.G. The pathogenesis of cardiac fibrosis. Cell Mol Life Sci. 2014; 71(4): 549-74.Wynn T.A.,Ramalingam T.R. Mechanisms of fibrosis: Therapeutic translation for fibrotic disease. Nat Med. 2012; 18(7): 1028-40.Еремичев Р.Ю. М.О.А., Александрушкина Н.А., Кулебякин К.Ю., Дыйканов Д.Т., Макаревич П.И. Сыворотка менструальной крови оказывает противофиброзное действие на мезенхимные стромальные клетки эндометрия человека. Цитология 2018; 60(2): 96-103.Ferguson M.W.,O'Kane S. Scar-free healing: From embryonic mechanisms to adult therapeutic intervention. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2004; 359(1445): 839-50.Chen C.Z., Peng Y.X., Wang Z.B. et al. The scar-in-a-jar: Studying potential antifibrotic compounds from the epigenetic to extracellular level in a single well. Br J Pharmacol. 2009; 158(5): 1196-209.Talele N.P., Fradette J., Davies J.E. et al. Expression of alpha-smooth muscle actin determines the fate of mesenchymal stromal cells. Stem Cell Reports. 2015; 4(6): 1016-30.Anders H.J.,Schaefer L. Beyond tissue injury-damage-associated molecular patterns, toll-like receptors, and inflammasomes also drive regeneration and fibrosis. J Am Soc Nephrol. 2014; 25(7): 1387-400.Desai V.D., Hsia H.C.,Schwarzbauer J.E. Reversible modulation of myofibroblast differentiation in adipose-derived mesenchymal stem cells. PLoS One. 2014; 9(1): e86865.Yang X., Chen B., Liu T. et al. Reversal of myofibroblast differentiation: A review. Eur J Pharmacol. 2014; 734: 83-90.