<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="research-article" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Genes &amp; Cells</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Genes &amp; Cells</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Гены и Клетки</trans-title></trans-title-group><trans-title-group xml:lang="zh"><trans-title>Genes and Cells</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">2313-1829</issn><issn publication-format="electronic">2500-2562</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Human Stem Cells Institute</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">120602</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.23868/gc120602</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>Articles</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>Статьи</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Research Article</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">OPTIMIZATsIYa TEKhNOLOGII KUL'TIVIROVANIYa DERMAL'NYKh FIBROBLASTOV DLYa TERAPEVTIChESKIKh TsELEY S POMOShch'Yu ROBOTIZIROVANNOY STANTsII</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>ОПТИМИЗАЦИЯ ТЕХНОЛОГИИ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ДЕРМАЛЬНЫХ ФИБРОБЛАСТОВ ДЛЯ ТЕРАПЕВТИЧЕСКИХ ЦЕЛЕЙ С ПОМОЩЬЮ РОБОТИЗИРОВАННОЙ СТАНЦИИ</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Fadeyev</surname><given-names>F. A</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Фадеев</surname><given-names>Ф. А</given-names></name></name-alternatives><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Ulitko</surname><given-names>M. V</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Улитко</surname><given-names>М. В</given-names></name></name-alternatives><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Lugovets</surname><given-names>D. V</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Луговец</surname><given-names>Д. В</given-names></name></name-alternatives><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Leontyev</surname><given-names>S. L</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Леонтьев</surname><given-names>С. Л</given-names></name></name-alternatives><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Sazonov</surname><given-names>S. V</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Сазонов</surname><given-names>С. В</given-names></name></name-alternatives><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Institute of Medical Cell Technologies</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Институт медицинских клеточных технологий</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2016-09-15" publication-format="electronic"><day>15</day><month>09</month><year>2016</year></pub-date><volume>11</volume><issue>3</issue><issue-title xml:lang="en">VOL 11, NO3 (2016)</issue-title><issue-title xml:lang="ru">ТОМ 11, №3 (2016)</issue-title><fpage>108</fpage><lpage>112</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2023-01-05"><day>05</day><month>01</month><year>2023</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2016, Eco-Vector</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2016, Эко-Вектор</copyright-statement><copyright-year>2016</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Eco-Vector</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Эко-Вектор</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/></permissions><self-uri xlink:href="https://genescells.ru/2313-1829/article/view/120602">https://genescells.ru/2313-1829/article/view/120602</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>The potential of the automated cell culture system CompacT SelecT (TAP Biosystems, UK) allows using it for the large scale production of dermal fibroblasts for cell therapy. Automated maintenance and expansion of fibroblasts requires evaluation of the proper seeding density and defining the time for the achievement of the optimal confluency of cell monolayer for further passaging. Objective - to determine the optimal parameters of dermal fibroblasts passaging for development of standardized protocol for automated cell cultivation using CompacT SelecT system. Human dermal fibroblasts were isolated from donor skin samples by enzyme dissociation. Cells proliferation rate was evaluated by the calculation of proliferation index. The dependence of proliferation rate from cell monolayer density was determined using the value of average number of divisions of single cell per day. The dependence of fibroblasts proliferation rate from seeding density (from 50 to 1.2х104cells/cm2) in various periods of cultivation (3rd, 5th, 7th and 9th day) was investigated. The inverse correlation between proliferation rate and seeding density, together with dramatic decrease of proliferation rate at fibroblasts monolayer confluency of (3.5-4.5)х104 cells/cm2, was demonstrated. The optimal seeding density was evaluated as 3х103 cells/ cm2, the most suitable density of cell monolayer for further passaging was evaluated as 3.5х104 cells/cm2. In case of high seeding density (1.2х104 cells/cm2), on day 7, when the cell monolayer density reached the critical value, the cell extinction occured, followed by renewal of cell growth. This phenomenon may be explained by the selection of cells capable of replication under conditions of high density of monolayer.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>Возможности роботизированной станции по культивированию и пересеву клеточных линий CompacT SelecT (TAP Biosystems, Великобритания) позволяют использовать ее для экспансии дермальных фибробластов, показанных для клинического применения. Автоматизация культивирования клеток требует оптимизации этого процесса, в том числе подбора наиболее подходящей исходной дозы фибробластов и определения времени достижения клеточным монослоем оптимальной плотности для пересева. Цель работы - определение оптимальных параметров пассирования дермальных фибробластов для стандартизации протокола их автоматизированного культивирования с помощью роботизированной станции CompacT SelecT. Дермальные фибробласты человека были получены из фрагментов кожи доноров методом ферментативной диссоциации. В качестве показателя пролиферативной активности использовали индекс пролиферации. Изменение скорости пролиферации в зависимости от плотности клеточного монослоя определяли по среднесуточному количеству делений на одну клетку. Влияние посевной дозы (от 50 до 1,2х104 кл/см2) на пролиферативную активность фибробластов оценивали в разные сроки эксперимента (3, 5, 7 и 9 сут. культивирования). Была установлена обратная зависимость пролиферативной активности фибробластов от величины посевной дозы и показано резкое снижение скорости пролиферации фибробластов после достижения клеточным монослоем плотности 3,5-4,5х104 кл/см2. В результате проведенного исследования было обнаружено, что оптимальная исходная доза фибробластов составляет 3х103 кл/см2, а наиболее подходящая для проведения дальнейшего пересева плотность монослоя - 3,5х104 кл/см2. В посевах с высокой исходной плотностью (1,2х104кл/см2) при достижении клеточным монослоем критической плотности на 7 сут. наблюдалась гибель части клеток, что сопровождалось возобновлением роста клеточной популяции на 9 сут. культивирования. Данный феномен может объясняться селекцией клеток, способных существовать в условиях повышенной плотности монослоя.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>dermal fibroblasts</kwd><kwd>automated cell cultivation</kwd><kwd>seeding density</kwd><kwd>proliferation rate</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>дермальные фибробласты</kwd><kwd>автоматизированное культивирование клеток</kwd><kwd>посевная доза</kwd><kwd>скорость пролиферации</kwd></kwd-group></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Алексеев А.А., Попов С.В. Современные методы трансплантации культивированных клеток кожи и ее эквивалентов при лечении ожогов. Комбустиология 1999; 1: 22-5.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>Зорин В.Л., Зорина А.И., Петракова О.С. и др. Дермальные фибробласты для лечения дефектов кожи. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия 2009; IV (4): 26-40.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>Фадеев Ф.А., Сергеев А.Г. Использование первичных клеточных культур для лечения ожогов кожи. Вестник уральской медицинской академической науки 2013; 46(4): 134-7.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Mehrabani D., Manafi N. Role of cultured skin fibroblasts in aesthetic and plastic surgery. World J. Plast. Surg. 2013; 2(1): 2-5.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Moravvej H., Rad M., Toossi P. et al. Development of an allogeneic cultured dermal substitute using a standard human fibroblast bank. Iranian J. Dermatology 2009; 12(4): 111-6.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Келлер Г., Себастиан Дж., Лакомбе Ю. и др. Сохранность инъецируемых аутологичных человеческих фибробластов. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины 2000; 130(8): 203-6.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Thomas R., Chandra A., Liu Ya. et al. Manufacture of a human mesenchymal stem cell population using an automated cell culture platform. Cytotechnology 2007; 55: 31-9.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Фадеев Ф.А., Луговец Д.В., Улитко М.В. Возможности использования технологии автоматизированного культивирования при получении клеточных линий для терапевтического применения. В: С.Л. Леонтьев, редактор. Материалы IV межрегиональной научнопрактической конференции «Клеточные технологии практическому здравоохранению»; 2015 21-23 октября; Екатеринбург, Россия. Екатеринбург: Изд-во Вестник Уральской медицинской академической науки; 2015. с. 57-62.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Takashima A. Establishment of fibroblast cultures. In: Bonifacino J., Harford J., Lippincott-Schwartz J. et al., editors. Curr. Protoc. Cell Biol.; Chapter 2: Unit 2.1. Hoboken, N.J., USA: John Wiley &amp; Sons, Inc.; 2001. p. 2.1.1-12.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>Kenagy R., Bierman E., Schwartz S. Regulation of low-density lipoprotein metabolism by cell density and proliferative state. J. Cell Physiol. 1983; 116(3): 404-8.</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>Heit I., Wieser R., Herget T. et al. Involvement of protein kinase CS in contact-dependent inhibition of growth in human and murine fibroblasts. Oncogene 2001; 20: 5143-54.</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>Moldaver M., Yegorov Y.E. Sparse plating increases the heterogeneity of proliferative potential of fibroblasts. Mechanisms of Ageing and Development 2009; 130: 337-42.</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>Masur S., Dewal H., Dinh T. et al. Myofibroblasts differentiate from fibroblasts when plated at low density. PNAS USA 1996; 93: 4219-23.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
