K voprosu o fibroblastopodobnykh kletkakh v perifericheskoy krovi cheloveka



Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription or Fee Access

Abstract

Проведена оценка in vitro клеточных и молекулярных процессов в многоклеточной системе мононуклеарных клеток крови 4 здоровых добровольцев при кратковременном (52 ч) контакте с искусственными материалами, in vivo индуцирующими остеогенную дифференцировку мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток костного мозга. В качестве раздражителей использованы титановые диски (диаметр 10 мм) с композитным (полимерно-кальцийфосфатным) и кальцийфосфатным покрытиями в остеогенной культуральной среде. Установлено с помощью цитологических, цитохимических методов и иммуноферментного анализа, что во фракции мононуклеарных лейкоцитов крови здорового человека может циркулировать до 18-29% стромальных, в том числе клоногенных клеток, индуцируемых in vitro к фибробластоподобной трансформации искусственным материалом с полимерно-кальцийфосфатной поверхностью. TNFα является одним из факторов, способствующих фибробластоидной морфофункциональной активности мононуклеарных клеток крови при сокультивировании с полимерно-кальцийфосфатным материалом. Разработанная методология может оказаться полезной в приложении к задачам клеточной терапии и тканевой инженерии.

Keywords

References

  1. Bucala R., Spiegel L.A., Chesney J. et al. Circulating fibrocytes define a new leukocyte subpopulation that mediates tissue repair. Mol. Med. 1994; 1(1): 71-81.
  2. Zvaifler N.J., Marinova-Mutafchieva L., Adams G. et al. Mesenchymal precursors in the blood of normal individuals. Arthritis Res. 2000; 2: 477-88.
  3. He Q., Wan C., Li G. Concise review: multipotent mesenchymal stromal cells in blood. Stem cells 2007; 25: 69-77.
  4. Kassis I., Zangi L., Rivkin R. et al. Isolation of mesenchimal stem cells from G-CSF mobilized human peripheral blood using fibrin microbeads. Bone Marrow Transplant. 2006: 37: 967-76.
  5. Shimizu N., Asai Т., Hashimoto S. et al. Mobilization factors of peripheral blood stem cells in healthy donors. Ther. Apher. 2002; 6(6): 413-8.
  6. Aerts F., Wagemaker G. Mesenchymal stem cell engineering and transplantation. In: J.A. Nolta, editor. Genetic Engineering of Mesenchymal Stem Cells. Springer; 2006: 1-44.
  7. Moore B.B. Fibrocytes as potential biomarkers in idiopathic pulmonary fibrosis. Am. J. Resp. Crit. Care Med. 2009; 179: 524-5.
  8. Saprina T.V., Khlusov I.A., Karlov A.V. Change of properties of mononuclear leukocytes at patients with an osteogenesis imperfect after operative treatment with use nanosized hydroxylapatite coatings. In: Proceedings of the 11th Essen Symposium on Biomaterials and Biomechanics: fundamentals and clinical applications, Essen, Germany 2009: 156.
  9. Фриденштейн А.Я., Лурия E.A. Клеточные основы кроветворного микроокружения.М.: Медицина; 1980.
  10. Khlusov I.A., Karlov A.V., Sharkeev Yu.P. et al. Osteogenic potential of mesenchymal stem cells from bone marrow in situ: role of physicochemical properties of artificial surfaces. Bull. Exp. Biol. Med. 2005; 140(1): 144-52.
  11. Bol'basov E.N., Karlov A.V., Guseev V.V., Khlusov I.A. Use of composition materials on the base of copolymer of tetrafluoroethylene with vinylidene fluoride for needs of traumatology and orthopaedics. In: Proceedings of the 11th Essen Symposium on Biomaterials and Biomechanics: fundamentals and clinical applications, Essen, Germany; 2009: 118-19.
  12. Sharkeev Yu.P., Legostaeva E.V., Eroshenko et al. The structure and physical and mechanical properties of a novel biocomposite material, nanostructured titanium-calcium-phosphate coating. Composite Interfaces. 2009; 16: 535-46.
  13. Чайкина M.B., Хлусов И.А., Карлов А.В., Пайчадзе К.С. Механохимический синтез нестехиометрических и замещенных апатитов с наноразмерными частицами для использования в качестве биосовместимых материалов. Химия в интересах устойчивого развития 2004; 12: 389-99.
  14. Дружинина Т.В., Хлусов И.А., Карлов А.В. и др. Маркеры остеогенеза в периферической крови как патогенетические факторы и предикторы системных эффектов имплантатов для остеосинтеза. Гений ортопедии 2007; (4): 83-8.
  15. Тиц Н. Клиническое руководство по лабораторным тестам: пер. с англ. М.: Юнимед-Пресс; 2003.
  16. Меньшиков В.В., редактор. Лабораторные методы исследования в клинике: Справочник. М.: Медицина; 1987.
  17. Новицкий В.В., Шахов В.П., Хлусов И.А., редакторы. Введение в методы культуры клеток, биоинженерии органов и тканей. Томск: STT; 2004.
  18. Автандилов Г.Г. Диагностическая медицинская плоидометрия. М.: Медицина; 2006.
  19. Ratner B.D., Hoffman A.S., Schoen F.J., et al. editors. Biomaterials science: an introduction to materials in medicine. 2nd edition. San Diego: Elsevier Academic Press; 2004.
  20. Карлов A.B., Хлусов И.А. Влияние продуктов деградации титановых имплантатов с модифицированной поверхностью на активность щелочной и кислой фосфатаз в культуре клеток костного мозга. Гений ортопедии. 2002; (4): 89-92.
  21. Риггз Б.Л., Мелтон ШЛ. Остеопороз: пер. с англ.СПб.:ЗАO «Издательство БИНОМ», «Невский диалект»; 2000.
  22. Серов В.В., Шехтер А.Б. Соединительная ткань: функциональная морфология и общая патология. М.: Медицина; 1981.
  23. Eghbali-Fatourechi G.Z., Lamsam J., Fraser D., et al. Circulating osteoblast-lineage cells in humans. N.Engl. J. Med. 2005; 353: 737-8.
  24. Браун А.Д., Моженок Т.П. Неспецифический адаптационный синдром клеточной системы. Л.: Наука; 1987.
  25. Легостаева Е.В., Хлусов И.А., Шаркеев Ю.П. и др. Эволюция структуры и свойств биокомпозита на основе наноструктурного титана и микродуговых кальций-фосфатных покрытий при взаимодействии с биосредой. Физическая мезомеханика 2006; (9): 205-8.
  26. Fromigue О., Наy Е., Barbara A. et al. Calcium sensing receptor- dependent and receptor-independent activation of osteoblast replication and survival by strontium ranelate. J. Cell. Mol. Med. 2009;13(8В): 2189-99.
  27. Wiemann В. M., Bingmann D., Franzka S. Oriented growth of osteoblast-like cells on two-dimensionally structured films of functionalized calcium phosphatenanoparticles on a silicon substrate. Advanced engineering materials 2007; 9(12): 1077-81.
  28. Blaine Т.A., Rosier R.N., Puzas J. E. et al. Increased levels of tumor necrosis factor-б and lnterleukin-6 protein and messenger RNA in human peripheral blood monocytes due to titanium particles. J. Bone Joint Surg. 1996; 78: 1181-92.
  29. Файерс У. Биологические методы лечения фактором некроза опухолей: преклинические исследования. В кн.: Де Вита В.Т., Хеллман С., Розенберг С.А., редакторы. Биологические методы лечения онкологических заболеваний: Пер. с англ. М.: Медицина; 2002: 309-43.
  30. Li W., Yu В., Li М. et al. NEMO-binding domain peptide promotes osteoblast differentiation impaired by tumor necrosis factor alpha. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2010; 391(2): 1228-33.
  31. Насонов Е.Л. Противовоспалительная терапия ревматических болезней. Москва: М-Сити; 1996.
  32. Zucali J.В., Broxmeyer Н.Е., Gross М. et al. Recombinant TNF alpha and beta stimulate fibroblast to produce hemopoietic growth factors in vitro. Immunol. 1988; 140: 840-4.
  33. Хейхоу Ф.Г., Кваглино Д. Гематологическая цитохимия. М.: Медицина; 1983.
  34. Chesney J., Bacher М., Bender A. et al. The peripheral blood fibrocyte is potent antigen-presenting cell capable of priming nanve T cell in situ. PNAS 1997; 94: 6307-12.
  35. Abe R., Donnely S.C., Peng T. et al. Peripheral blood fibrocytes: differentiation pathway and migration to wound sites. J. Immunol. 2001; 166: 7556-62.
  36. Gomperts B.N., Strieter R.M. Fibrocytes in lung disease. J. Leuk. Biol. Biol. 2007; 82: 449-56.
  37. Schmidt M., Sun G., Stacey M.A. et al. Identification of circulating fibrocytes as precursors of bronchial myofibroblasts in asthma. J. Immunol. 2003; 171: 380-9.
  38. Moeller A., Gilpin S.E., Ask K. et al. Circulating fibrocytes are an indicator of poor prognosis in idiopathic pulmonary fibrosis. Am. J. Resp. Crit. Care Med. 2009; 179: 588-94.
  39. Kuznetsov S.A., Mankani M.H., Gronthos S. et al. Circulating skeletal stem cells. J. Cell. Biol.2001; 153(5): 1133-9.
  40. Pilling D., Vakil V., Gomer R.H. Improved serum-free culture conditions for the differentiation of human and murine fibrocytes. J. Immunol.Methods. 2009; 351(1-2): 62-70.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2010 Eco-Vector


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: 

This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies