C-kit and desmin-positive cells in expression in islets of pancreas during alloxan diabetes in rats

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

Nowadays there are findings that C-kit-positive and desmin-positive stellate cells help to regenerate endocrine part of pancreas. But still it is unknown about their role and the way of differentiation of these cells during pancreas regeneration. That's why the aim of our work was to study the dynamic of these cells population during alloxan diabetes in rats. The work was made on 33 rats with experimental diabetes. Blood glucose, insulin and glucagon levels were analyzed. Also the expression of desmin (marker of stellate cells), a-SMA (marker of myofibroblast), C-kit (marker of endocrine stem cells), insulin and glucagon (marker of differentiated a- and р-cells of Langerhans islets) was studied. The expression of desmin was found after one day of experimental diabetes in islets cells of pancreas. Maximum of these cells was after the third day of the experiment. Also after one day of the experiment C-kit-positive cells, which expressed insulin and glucagon were found. We suppose that stellate cells are the main factor of microenvironment for differentiation of C-kit-positive progenitor cells into р-cells through the stage of glucagon-positive cells because stellate pancreas cells can produce different growth factors and components of intercellular matrics.

Full Text

Проблема поиска новых подходов к лечению сахарного диабета I типа остаётся актуальной задачей современной медицины. Пациенты до сих пор нуждаются в ежедневных инъекциях экзогенного инсулина, причём полностью контролировать уровень глюкозы в крови довольно сложно. Поэтому нередко при сахарном диабете развиваются осложнения, которые приводят молодое работоспособное население к ранней инвалидности [1]. Перспективной альтернативой существующим методам заместительной терапии сахарного диабета может стать трансплантация клеток-предшественниц эндокриноцитов поджелудочной железы (ПЖ). Их применение поможет устранить причину возникновения сахарного диабета I типа - дефицит р-клеток островков Лангерганса, e-mail: mfkaligin@mail.ru что позволит пациентам отказаться от введения экзогенного инсулина. Главной проблемой в разработке таких методов лечения является то, что до сих пор не идентифицированы стволовые клетки эндокриноцитов. Предполагают, что эти клетки могут находиться среди клеток эпителия протоков ПЖ или среди ацинарных клеток. Не исключено, что стволовые клетки эндокриноцитов локализуются внутри самих островков [2]. Одним их подходов для идентификации может быть выявление этих клеток по специфическим маркёрам, в частности по C-kit или CD117, которые экспрессируются многими типами стволовых и про-гениторных клеток. Это трансмембранный рецептор, поэтому с его помощью можно не только идентифицировать клетки-предшественницы, но и выделять их. Ранее нами была показана важная роль C-kit+-клеток ПЖ человека в пренатальном развитии островков Лангерганса [3]. Еще одной популяцией клеток, которые претендуют на роль предшественниц р-клеток, являются звёздчатые клетки ПЖ, которые по своему фенотипу и свойствам очень близки к звёздчатым клеткам печени. Клетки обеих популяций накапливают витамин А, секретируют широкий спектр факторов роста и синтезируют макромолекулы межклеточного вещества, в связи в чем именно активностью этих клеток многие авторы объясняют развитие фиброза печени и ПЖ [4]. Одним из основных маркеров звёздчатых клеток является белок промежуточных филаментов десмин. Имеются данные о том, что эти клетки могут быть источником развития эндокрино-цитов ПЖ [5, 6]. Однако до сих пор нет сведений об участии клеток данной популяции в регенерации ПЖ и, в частности, об их роли в восстановлении эн-докриноцитов при различных видах повреждения, в том числе при сахарном диабете I типа. Поэтому целью нашего исследования стало изучение популяций клеток, экспрессирующих C-kit и десмин, в процессе регенерации ПЖ при экспериментальном диабете 1 типа. Материал и методы Исследование проведено на 33 белых беспородных крысах самцах, которые были разделены на три группы. Животным 1 группы внутрибрюшинно вводили аллоксан (Sigma-Aldrich) в 1 мл 0,02 М ацетатного буфера рН = 4,0 в дозе 180 мг/кг, животным 2 группы вводили ацетатный буфер (контроль действия растворителя). Животным 3 группы ничего не вводили (норма). Через 1, 2, 3, 5, 7, 14, 21, 28 сут. у животных забирали кровь для биохимического исследования, выводили из эксперимента и забирали ПЖ для морфологического анализа. Парафиновые срезы ПЖ окрашивали иммуногистохимически с коммерческими антителами к десмину (1:30, D33, DAKO), a-SMA (1:50, клон 1А4), С-kit (1:200; клон Т595, Novocastra, Великобритания), инсулину (1:40; клон 2D11-45, Novocastra, Великобритания) и глю-кагону (1:50; кроличьи поликлональные антитела, Novocastra, Великобритания). Уровень глюкозы определяли в сыворотке крови глюкозооксидазным методом [7]. Полученные данные подвергали статистической обработке с помощью статистического графического пакета Microsoft Excel 2010. Результаты Через сутки после введения аллоксана в крови крыс наблюдали повышение уровня глюкозы, что свидетельствовало о развитии гипергликемии. На этом сроке в единичных клетках островков ПЖ крыс мы выявили экспрессию C-kit, и она сохранялась в этих клетках на всех исследованных сроках (рис. 1А). У контрольных животных экспрессию C-kit в клетках ПЖ мы не наблюдали. При проведении серий двойного окрашивания на инсулин, глюкагон и C-kit мы обнаружили, C-kit'-клетки, которые продуцировали и инсулин, и глюкагон (рис. 1Б-Г). В норме в ПЖ крысы были выявлены единичные десмин+-звездчатые клетки вокруг ацинусов, а также десмин+-гладкомышечные клетки сосудов. В островках не наблюдали клеток, в цитоплазме которых присутствовал бы десмин. Через сутки после введения аллоксана количество десмин+-клеток вокруг ацинусов увеличилось. Еще через сутки таких клеток становилось ещё больше, а через 3 сут. после введения аллоксана число десмин+-клеток достигло максимума и начинало уменьшаться после 5 сут. эксперимента (рис. 2В, Г). В островках десмин+-клетки были выявлены через сутки после введения аллоксана, максимальное их число, так же, как и вокруг ацинусов, отмечено через 3 сут., а после 5 сут. их количество снижалось (рис. 2). При этом на всех сроках эксперимента паттерн окрашивания на a-SMA не отличался от нормы, экспрессия наблюдалось только в мышечной оболочке сосудов (рис. 2Д), что свидетельствует о том, что увеличение количества десмин+-клеток на фоне ЭД не сопровождается их трансдифференцировкой в мио-фибробласты и, следовательно, повышением риска развития фиброза ПЖ. Рис. 1. Клетки островка Лангерганса ПЖ крысы при экспериментальном диабете: А - единичные клетки, экспрессирующие C-kit; Б - клетки, одновременно экспрессирующие инсулин [синий цвет) и глюкагон (красный цвет), обозначены стрелками; В - клетки, одновременно экспрессирующие C-kit [красный цвет) и глюкагон [синий цвет), обозначены стрелками; Г - клетки, одновременно экспрессирующие C-kit [красный цвет) и инсулин [синий цвет), обозначены стрелкам. Иммуногистохимическая реакция. Ув.: А *400; Б-Г *1000 Рис. 2. Клетки островка Лангерганса ПЖ крысы: А-Г - экспрессия десмина (красный цвет); А - в норме; Б - 1 сут. экспериментального диабета; В - 2 сут. экспериментального диабета, Г - 5 сут. экспериментального диабета; Д - экспрессия a-SMA [красный цвет), 14 сут. экспериментального диабета. Иммуногистохимическая реакция. Ув.: А-Г *400; Д *200 Обсуждение Результаты исследования свидетельствуют о том, что десмин+ и С-к^+-клетки появляются в островках ПЖ при экспериментальном диабете, вызванном аллоксаном, следовательно, каким-то образом могут участвовать в регенерации островков. Однако характер этого участия, по-видимому, различен. Если количество C-kit+-клeток увеличивается и они начинают экспрессировать сначала глюкагон, а затем инсулин, что подтверждает возможность их дифференцировки в р-клетки островков Лангерганса, то десмин+-клетки, главным образом, увеличивались количественно без последующей продукции гормонов. Учитывая их способность к секреции факторов роста и компонентов межклеточного вещества, можно предположить, что они обеспечивают необходимое микроокружение для дифференцировки C-kit'-клеток островков в эндокриноциты. При этом нельзя исключать того, что звёздчатые клетки непосредственно сами могут восстанавливать популяцию Р-клеток, однако по какому пути идёт их дифферен- цировка не ясно. Рассматривая полученные данные в комплексе, можно предположить, что при повреждении р-клеток гипергликемия запускает активацию звёздчатых клеток, которые начинают синтезировать факторы роста и цитокины. Синтезированные факторы роста взаимодействуют с рецепторами прогени-торных клеток, и, в частности, с рецептором фактора стволовых клеток C-kit [9]. Это взаимодействие приводит к дифференцировке C-kit+ в р-клетки через стадию глюкагон-продуцирующих клеток. Полученные результаты изучения изменений популяций звёздчатых клеток ПЖ и С-к^+-клеток при экспериментальном диабете позволяют также предположить, что одновременная трансплантация клеток обеих популяций может быть более эффективной для восстановления островков ПЖ, чем изолированная трансплантация только C-kit+-клеток. Однако проверка этой гипотезы требует продолжения исследований в направлении разработки методов клеточной терапии сахарного диабета I типа.
×

About the authors

M. S Kaligin

Kazan Federal University; Kazan State Medical University

Kazan

A. S Plushkina

Kazan Federal University; Kazan State Medical University

Kazan

A. A Titova

Kazan Federal University; Kazan State Medical University

Kazan

MA. A Titova

Kazan Federal University; Kazan State Medical University

Kazan

A. A Gumerova

Kazan Federal University

Kazan

A. P Kiassov

Kazan Federal University

Kazan

References

  1. Дедов И.И., Мельниченко Г.А., Фадеев В.Ф. Эндокринология. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2007, 432 С.
  2. Закирьянов А.Р., Поздняков О.М., Онищенко Н.А. и др. Регенерационная клеточная терапия сахарного диабета 1 типа и его осложнений. Вестник РАМН 2008; 3: 42-51.
  3. Калигин М.С., Гумерова А.А, Титова М.А. и др. C-kit маркёр стволовых клеток эндокриноцитов поджелудочной железы. Морфология 2011; 140 (4): 32-7.
  4. Kim N., Yoo W., Lee J. et al. Formation of vitamin A lipid droplets in pancreatic stellate cells requires albumin. Inter. J. Gastroenter. Hepatol. 2009; 58(10): 1382-90.
  5. Kordes C., Sawitza I. et al. Stellate cells from rat pancreas are stem cells and can contribute to liver regeneration. PLoS ONE 2012; 12: 51878.
  6. Mato E., Lucas M., Petriz J. et al. Identification of pancreatic stellate cell population with properties of progenitor cells: new role for stellate cells in pancreas. Biochem J. 2009; 421: 181-91.
  7. Орехович В.Н. Современные методы в биохимии. М.: Наука; 1977, 392 С.
  8. Li J., Goodyer C.G., Fellows F. et al. Stem cell factor/c-Kit interactions regulate human islet-epithelial cluster proliferation and differentiation. Int. J. Bioch. Cell Biol. 2006; 38: 961-72.
  9. Haas S.L., Fitzner B., Jaster R. et al. Transforming growth factor-p induces nerve growth factor expression in pancreatic stellate cells by activation of the ALK-5 pathway. Growth Factors 2009; 27(5): 289-99.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2013 Eco-Vector



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: